Das Dokument behandelt die verschiedenen Neurotransmittersysteme im menschlichen Gehirn, einschließlich der Identifikation, Synthese und Funktion von Neurotransmittern wie Acetylcholin, Dopamin und Serotonin. Es beschreibt Methoden wie Immunzytochemie und In-situ-Hybridisierung zur Lokalisierung von Neurotransmittern sowie deren Rolle bei der synaptischen Übertragung und Kommunikation zwischen Neuronen. Zudem werden die biochemischen Grundlagen und die Klassifikation von Rezeptoren sowie die Bedeutung von Co-Transmittern und anderen chemischen Botenstoffen wie ATP und Stickoxid untersucht.

1. Kapitel 6.1
Neurotransmitter Systeme
Einführung
Das menschliche Gehirn ist ein System chemischer Reaktionen, besonders wichtig sind synaptische
Übertragungen und im Zusammenhang damit Neurotransmitter (die 3 größten Gruppen: Amine,
Aminosäuren, Peptide).
Loewi (1920) identifizierte den ersten Neurotransmitter, Acetylcholin (ACh). Henry Dale führte die
Begriffe „cholinergeic“ und „noradrenergic (NE)“ (Neuronen die den Transmitter Norepinephrin
verwenden) ein.
Heute gibt es weiters: „glutamatergic synapses“ die Glutamate verwenden, „Gabaergic synapses“ die
GABA verwenden, „peptidergic synapses“ die Peptide verwenden, etc…
„cholinergic system“: Neurotransmittersysteme die ACh verwenden
Untersuchung der Neurotransmittersysteme (Studying Neurotransmitter
Systems)
Um ein Neurotransmittersystem zu untersuchen, muss man zuerst den Neurotransmitter
identifizieren. Es ist sehr schwierig, diese Neurotransmitter herauszuarbeiten, da im Gehirn sehr viele
chemische Reaktionen vor sich gehen.
Neurowissenschaftler haben diese Kriterien ausgearbeitet, um Neurotransmitter zu identifizieren:
- Das Molekül muss im „presynaptic“ Neuron synthetisiert und gespeichert werden.
- Das Molekül muss freigelassen werden, wenn das „presynaptic axon terminal“ stimuliert
wird.
- Das Molekül muss, wenn es experimentell angewendet wird, eine Antwort in der
„postsynaptic“ Zelle produzieren, die eine Nachahmung der Antwort ist bei der Freisetzung
des Neurotransmitter in dem „presynaptic“ Neuron.
Lokalisierung von Transmittern und Transmittersynthetisierenden Enzymen
(Localization of Transmitters and Transmitter-Synthesizing Enzymes)
Wenn Wissenschaftler denken, einen Neurotransmitter gefunden zu haben, ist der erste Schritt zu
beweisen, dass das Molekül lokalisiert in und synthetisiert von bestimmten Neuronen wird.
Die 2 wichtigsten Verfahren dazu sind: Immuncytochemie und In-situ Hybridisierung

2. Immuncytochemie: wird verwendet um bestimmte Moleküle bestimmten Zellen zuzuordnen. Das
Prinzip hinter diesem Verfahren ist recht einfach. Wenn der Neurotransmitterkandidat chemisch
gereinigt wurde, wird er einem Tier ins Blut injiziert, wo er eine Antwort des Immunwesens
hervorruft. Ein Aspekt davon ist, dass diese Immunantworten große Proteine, genannt Antikörper,
generieren, an die sich die Neurotransmitterkandidaten gut binden können. Diese Antikörper können
chemisch markiert werden, werden sie dann im Hirngewebe eingesetzt binden sie sich nur an die
Zellen, die den Transmitterkandidaten enthalten. Durch Immuncytochemie kann jedes Molekül, für
das ein spezieller Antikörper generiert werden kann, identifiziert werden.
[Abb. 6.2, 6.3]
In-situ Hybridisierung: wird ebenfalls eingesetzt, um festzustellen, ob eine Zelle bestimmte Proteine
oder Peptide synthetisiert. Für jedes Polypeptid, das von einem Neuron synthetisiert wird, gibt es ein
spezifisches mRNA-Molekül. Die mRNA-Abschrift besteht aus 4 unterschiedlichen Nukleinsäuren, die
unterschiedlich aneinander gebunden, einen Strang ergeben. Eine Nukleinsäure bindet sich immer
komplementär zu einer anderen, ist der Strang der m-RNA also bekannt, kann im Labor der
komplementäre Strang hergestellt werden. Dieser Strang wird „probe“ genannt (im deutschen?), der
Vorgang wenn der Originalstrang und der künstlich hergestellte sich aneinander binden wird
Hybridisierung genannt. Der komplementäre Strang wird markiert und anschließend in Gehirngewebe
eingesetzt. Nach einer Zeit sucht man die durch den komplementären Strang markierten Neuronen.
Normalerweise werden die „probes“ markiert, indem man sie radioaktiv macht. Den Vorgang um die
radioaktive Markierung sichtbar zu machen nennt man Autoradiographie.
[Abb. 6.4]
Zusammenfassung
Immuncytochemie ist eine Methode um spezielle Moleküle zu lokalisieren, auch Proteine, in
bestimmten Hirnregionen. In-situ Hybridisierung lokalisiert spezielle mRNA-Transkripte für Proteine.
Zusammen ermöglichen uns diese Methoden festzustellen, ob ein Neuron einen
Transmitterkandidaten enthält und synthetisiert.
Untersuchung der Transmitterfreisetzung (Studying Transmitter Release)
Nun muss gezeigt werden, dass ein Transmitter freigesetzt wird, wenn das Neuron stimuliert wird.
Manchmal kann man ein bestimmtes Set aktivieren, um die biologische Aktivität zu testen und zu
sehen, ob es zu bestimmten Effekten kommt, diese können dann chemisch analysiert werden, um die
Struktur der aktivierten Moleküle zu enthüllen.
Im Gegensatz zum peripheren Nervensystem (peripheral nervous system, PNS), das zentrale
Nervensystem (central nervous system, CNS) beinhaltet eine Mischung aus verschiedenen Synapsen
und verschiedenen Neurotransmitter. Dies macht es oft unmöglich, nur einen ganz bestimmten
Neurotransmitter zu stimulieren. Forscher müssen also viele Synapsen in einer Hirnregion stimulieren
und alle verschiedenen Chemikalien, die freigesetzt werden, sammeln und messen. Eine Möglichkeit
ist die „in vitro“ Methode. „brain slices“ werden „in vitro“ aufbewahrt und in einer Lösung gebadet,
die eine hohe K+-Konzentration aufweist. Diese Methode bewirkt auch eine Depolarisation innerhalb
der Membran. Da eine Transmitterfreisetzung nur stattfindet, wenn Ca2+ im Axonterminal
freigesetzt wird, muss ebenfalls bewiesen werden, dass der Neurotransmitter nur freigesetzt wird,
wenn in der Lösung auch Ca2+ enthalten ist.

3. Untersuchung der synaptischen Effekte (Studying Synaptic Mimicry)
Wenn ein Molekül lokalisiert in, synthetisiert bei und freigesetzt von einem Neuron wird, ist dies noch
immer nicht ausreichend um es als Neurotransmitter zu klassifizieren.
3. Kriterium: Das Molekül muss die gleiche Reaktion hervorrufen, wie bei der Freisetzung der
Neurotransmitter (von presynaptischen Neuron).
Methode: „microionophoresis“ (Neurotransmitterkandidat wird in einer Lösung gelöst mit
elektrischer Ladung; mit einer sehr feinen Glaspipette werden kleine Mengen des Kandidaten nahe
bei der postsynaptischen Membran injiziert, wobei die Kandidaten durch einen elektrischen Strom
müssen; um die Reaktion in der postsynaptischen Membran zu messen wird eine Mikroelektrode
eingesetzt;)
Untersuchungen von Rezeptoren (Studying Receptores)
Jeder Neurotransmitter bindet sich an spezielle Rezeptoren (Regel: keine 2 Neurotransmitter können
sich an einen Rezeptor binden, aber ein Neurotransmitter an viele verschiedene Rezeptoren). Die
verschiedenen Rezeptoren, an die sich ein Neurotransmitter bindet, werden „receptor subtypes“
genannt.
3 Methoden haben sich als erfolgreich erwiesen: Neuropharmakologische Analyse,
Ligandenbindungsverfahren, Molekulare Analyse
Neuropharmakologische Analyse: das meiste, das wir über Rezeptoruntertypen wissen, wissen wir
aufgrund dieser Methode (zB das Halte- und Stützapparat und Herzmuskeln unterschiedlich auf
cholinerge Mittel reagieren); Rezeptoren haben Antagonisten (sind meist nacheinander benannt);
Eine Möglichkeit Rezeptoruntertypen zu unterscheiden ist, verschiedene Antagonisten zu verwenden.
Ligandenbindungsverfahren: normalerweise beginnt man damit, den Neurotransmitter zu
identifizieren, dank dieser Methode kann man jedoch die Rezeptoren identifizieren, ohne den
Neurotransmitter zu kennen;
Solomon Snyder (Johns Hopkins University) untersuchte verschiedene Bindungen mit Opiaten. Seite
Forschungsfrage war, wie Heroin, Morphin und andere Opiate auf das Hirn wirken. Die Idee war, dass
Opiate möglicherweise Agonisten für spezielle Rezeptoren im Gehirn sein könnten. Um die Idee zu
testen wurden Opiate radioaktiv markiert, die sich nun an die Rezeptoren im Gehirn binden und
wiedergefunden werden konnten.
Jegliche chemische Verbindung, die sich nur an eine spezielle Seite des Rezeptors bindet, wird lingand
genannt. Der Lingand kann ein Agonist, ein Antagonist oder der Neurotransmitter selbst sein.
Molekulare Analyse: diese Methode half dabei, die Neurotransmitter-Rezeptor-Proteine in 2
verschiedene Klassen einzuteilen: „transmitter-gated ion channels“ und „G-protein coupled
receptors“
Besonders wichtig ist, dass man sich bewusst ist, dass die große Bandbreite an möglichen
Kombinationen nicht von Neuronen hergestellt werden und auch falls sie es würden, nicht ordentlich
funktionieren würden.

4. Die Biochemie der Neurotransmitter (Neurotransmitter Chemistry)
Die Forschung hat gezeigt, dass der Großteil der Neurotransmitter Aminosäuren, Amine und Peptide
sind. Evolution hat sich als konservativ und opportunistisch erwiesen und sie verwendet
alte/bekannte neue Dinge oft auf eine neue Art und Weise (zB Neurotransmitter: bestehen großteils
aus den Basischemikalien des Lebens, denselben Substanzen, die alle Lebewesen für ihren
Stoffwechsel verwenden);
Die Idee, dass ein Neuron nur einen Neurotransmitter hat, wird oft „Dale´s Prinzip“ genannt (viele
Neurone, die Peptide enthalten missachten dieses Prinzip, diese Neurone setzen oft eine
Aminosäure bzw. ein Amin und ein Peptid frei). Wenn ein Nervenende 2 oder mehr Transmitter
freisetzt, werden diese Co-Transmitter genannt.
Cholinerge Neuronen (Cholinergic Neurons)
Acetylcholin (ACh): Rückenmark, Hirnstamm; ACh-Synthese benötigt ein spezielles Enzym: „cholin
acetyltransferase (ChAT)“
[siehe Box 6.1: Pumpen für Ione und Transmitter; Abb. 6.10, Abb. 6.11]
Catecholaminerge Neuronen (Catecholaminergic Neurons)
Die Aminosäure Tyrosin ist die Vorläuferverbindung für 3 verschiedene Amine/ Neurotransmitter, die
alle aus einer chemischen Struktur bestehen, die „catechol“ genannt wird, diese Neurotransmitter
werden allgemein Catecholamine genannt (zB Dopamin, Norepinephrin, Epinephrin, Adrenalin).
Catecholaminerge Neurone spielen eine Rolle bei der Motorik, Stimmung, Aufmerksamkeit und
verschiedenen Funktionen der Eingeweide.
Alle Catecholaminergen Neurone enthalten „tyrosine hydroxilase (TH)“. TH katalysiert den ersten
Schritt in der catecholaminergen Synthese, die Umwandlung von Tyrosin in eine Verbindung, die
„dopa“ genannt wird. Die Aktivität der TH wird vom Cytosol bestimmt. Die Regulation wird „end-
product inhibition“ genannt. Dopa wird durch das Enzym „dopa decarboxylase“ zum
Neurotransmitter Dopamin gewandelt (denke an die Krankheit Parkinson).
Neuronen, die Norepinephrin als Neurotransmitter enthalten, benötigen das Enzym „dopamine beta-
hydroxylase (DBH)“, welches Dopamin zu Norepinephrin umwandelt. Dies wurde oft in den „synaptic
vesicles“, nicht aber im Cytosol gefunden.
Epinephrin (Adrenalin) benötigt das Enzym „phentolamine N-methyltransferase (PNMT), welches
Norepinephrin zu Epinephrin umwandelt. Überraschenderweise kommt PNMT im Cytosol von
adrenergenen Axonenden vor. Norepinephrin wird zuerst in den „vesiclen“ synthetisiert und
anschließend im Cytosol freigesetzt, um in Epinephrin umgwandelt zu werden. Danach wird das
Epinephrin zurück in die Vesikel transportiert, um dort freigesetzt zu werden. Epinephrin wird
ebenfalls in den Nebennieren freigesetzt.
Die chatecholaminergen Systeme haben kein Enzym analog zur AChE. Stattdessen werden die
Aktivitäten im synaptischen Spalt begrenzt durch die Rückführung der Neurotransmitter zum
Axonende.

5. [Abb. 6.12, Abb. 6.13]
Serotonerge Neuronen (Serotonergenic Neurons)
Serotonin wird von der Aminosäure Tryptophan abgeleitet. Serotonerge Neuronen sind relativ selten,
spielen aber eine große Rolle im Gehirn bezüglich Stimmung, Schlaf und emotionalen Verhaltens.
[siehe Abb.6.14, Synthese des Serotonins von Tryptophan]
Aminoaciderge Neuronen (Amino Acidergic Neurons)
Die Aminosäuren Glutamat, Glycin, GABA dienen als Neurotransmitter in den meisten Synapsen des
Zentralnervensystems (Abb. 6.15).
Glutamat und GABA werden synthetisiert von Glucose und Vorläuferverbindungen, durch Aktionen
von Enzymen, die in allen Zellen vorhanden sind. Unterschiede in der Synthese sind eher quantitativ
als qualitativ (zB ist die Glutamatkonzentration in dem Cytosol vom glutamatergenen Axonende
ungefähr 20mM (2-3 Mal) höher als in nicht-glutamatergenen Zellen;).
Da GABA nicht eine der 20 Aminosäuren, die benötigt werden um Proteine herzustellen, ist, wird es
nur in großen Mengen von Neuronen, die es als Neurotransmitter verwenden synthetisiert. Die
Vorläuferverbindung von GABA ist Glutamat und das Enzym um es zu synthetisieren ist „glutamatic
acid decarboxylase (GAD)“. Immunocytochemie zeigte, das GABA –ergene Neuronen weit verbreitet
im Gehirn sind, sie sind die Quelle der „synaptic inhibition“ im Nervensystem.
[Abb. 6.16]
Andere Neurotransmitter und interzelluläre Signalmoleküle (Other
Neurotransmitter Candidates and Intercellular Messengers)
Abgesehen von Aminosäuren und Amine gibt es noch eine Reihe weiterer kleinerer Moleküle, die als
chemische Botenstoffe agieren, zB ATP, ein sehr wichtiges Molekül für den zellulären Stoffwechsel, ist
einem Neurotransmitter sehr ähnlich. ATP gibt es in Vesikeln in vielen Synapsen des CNS und des PNS.
Es wird ebenfalls in den Spalt freigesetzt, Ca2+ abhängig, wie die klassischen Neurotransmitter. Oft
tritt ATP mit den klassischen Transmittern auf. ATP regt einige Neurone direkt an, indem es einen
Kationkanal erzeugt, manche Funktionen des ATP sind dem des Glutamates sehr ähnlich. ATP bindet
sich an „purinergic receptores“, von denen einige „transmitter-gated ion channels“ sind.
Sehr interessant sind kleine Lipidmoleküle, sogenannte Endocannabinoide, die von postsynaptischen
Neuronen freigesetzt werden und eine Reaktion in der presynaptischen Zelle hervorrufen (siehe Box
6.2 Das Gehirn ist von Endocannabinoiden abhängig). Endocannabinoide sind „retrogarde
messengers“ (Richtung: post zu pre).
3 ungewöhnliche Qualitäten von Endicannabinoiden:
- Nicht verpackt in Vesikel, sondern „on demand“
- Klein und membrandurchlässig; sobald sie synthetisiert sind können sie durch die Membran
ihrer Originalzelle diffundieren und so zu den Nachbarzellen gelangen

6. - Binden sich an CB1-Typ (G-protein coupled receptores; Haupteffekt: Reduzierung des Öffnens
der presynaptischen Kalziumkanäle; dieser generelle Mechanismus wird im Gehirn
weiterverbreitet genutzt, Forscher beginnen gerade langsam damit diese Funktionen zu
verstehen, siehe Box 6.3 Die Entschlüsselung der Sprache der Neuronen) von cannabinoiden
Rezeptoren
Ein weiterer chemischer Botenstoff: das Gasmolekül Stickoxid (nitric oxid, NO):
Synthetisiert von der Aminosäure Arginin, sehr wichtig für den Blutfluss; im Nervensystem ein
weiteres Bsp. für „ retrograde messengers“; kann leicht durch Zellen diffundieren, kann sogar in eine
Zelle eindringen, um die Zelle hinter dieser zu stimulieren;
Außerdem: Kohlenmonoxid (Beweise noch sehr mager)
Viele der Chemikalien, die für Neurotransmitter verwendet werden, sind in den anderen Körperteilen
ebenfalls in höher Konzentration vertreten, wo sie ganz andere Aufgaben haben können.

7. Kapitel 6 Teil 2 1/9
Ligandengesteuerte Kanäle (Transmitter-Gated Channels)
(Liganden (von lat. binden) eines Rezeptors sind alle chemischen Verbindungen die an diesen
binden.)
ACh und die Aminosäureneurotransmitter bewirken eine schnelle synaptische Übertragung weil
sie auf ligandengesteuerte Kanäle einwirken.
Ein Kanal:
• empfindlicher Detektor für chemische Verbindungen und Spannungen
• starke Ionenströme mit großer Genauigkeit regulieren
• er kann zwischen sehr ähnlicher Ionen unterscheiden und sie selektieren
• kann von anderen Rezeptorsystemen reguliert werden.
• Nur etwa 11 nm (nanometer) lang und selbst mit computerunterstützten Systemen kaum zu
erkennen.
• Verschiedene Transmitterbindungsstellen bewirken dass ein Kanal auf Glutamat und ein
anderer auf GABA reagiert.
• Aminosäurereste um die engen Ionenporen lassen nur Na+ und K+ hindurch oder Ca2+ oder
Cl-

8. Kapitel 6 Teil 2 2/9
[ Entschlüsselung der Sprache der Neuronen: (nur wichtige Infos)
• früher wurde an den einfachen Nervensystemen von Intervebraten (Tiere ohne Wirbelsäule,
z.B: Quallen) geforscht
• es lassen sich vom Gehirn dünne Schnitte herstellen die viele Stunden in vitro gehalten
werden können. → erlaubt das Arbeiten mit dem Gehirn von Säugetieren
• depolarisationsinduzierte Unterdrückung der Hemmung (depolarizationinduced
suppression of inhibition, DSI)
• DSI wird durch eine postsynaptische Depolarisation induziert und die GABA Freisetzung
hemmt. (retrograde Signalübertragung)
• eine Erhöhung der postsynaptischen Calciumkonzentration reicht aus um DSI auszulösen
• Endocannabinoide könnten daran (als Botenstoffe) beteiligt sein
• Agonisten bilden DSI nach (indem sie GABA Freisetzung blockieren)
• Antagonisten können DSI vollständig verhindern ]
Grundstruktur der ligandengesteuerten Kanäle
nikotinische ACh-Rezeptor:
• am besten untersuchte ligandengesteuerte Ionenkanal
• befindet sich an motorischen Endplatten der Skelettmuskulatur
• fünf Proteinuntereinheiten bilden eine Pore (Pentamerer komplex)
◦ vier verschiedene Arten von Polypeptiden (α, β, γ, δ)
◦ Ein Kanal besteht aus zwei α und jeweils einem β, γ und δ (kurz: α2βγδ)
◦ auf jeder α Untereinheit gibt es eine Bindungsstelle.
◦ Wenn an beide Bindungsstellen je ein ACh Molekül angebunden wird öffnet sich der
Kanal
• (Im Gegensatz dazu bestehen die meisten Rezeptoren nur aus vier (α2 β2) Untereinheiten)
• jede Untereinheit hat eine andere Primärstruktur
Es gibt Gemeinsamkeiten zwischen anderen ligandengesteuerten Ionenkanälen und ACh-
Rezeptoren:
◦ vier hydrophobe Abschnitte die wahrscheinlich die Membran durchspannen.
◦ Pentamere Komplexe, ähnlich zum nikotischen ACh-Rezeptor
Außnahmen:
• glutamatabhängige Kanäle (Glutamat-Rezeptoren):
◦ Tetramer, vier Untereinheiten bilden einen funktionsfähigen Kanal.
◦ M2 Region durchspannt die Membran nicht sondern bildet eine Haarnadelschleife die
von der Zellinnenseite her in die Membran ein und auch wieder austritt
◦ Die Struktur ähnelt der von Kaliumkanälen. (→ Hypothese dass die beiden Kanäle von
einem gemeinsamen Ionenkanalvorläufer stammen.)
• purinerge (ATP-)Rezeptoren:
◦ jede Untereinheit enthält nur zwei membrandurchspannende Abschnitte
◦ die Anzahl der Untereinheiten ist unbekannt.
Aminosäureabhängige Kanäle (Amino Acid-Gated Channels ):
• im ZNS die meisten der schnellen synaptischen Signalübertragungen.
• Einfluss von der Struktur auf die Eigenschaften:
◦ Aufgrund der Pharmakologie ihrer Bindungsstellen lässt sich beschreiben, welche
Transmitter sie beeinflussen und wie die Substanzen und Medikamente mit ihnen in

9. Kapitel 6 Teil 2 3/9
Wechselwirkung treten.
◦ Die Kinetik der Transmitterbindung und der Kanalsteuerung bestimmen die Dauer ihrer
Wirkung.
◦ Die Selektivität der Ionenkanäle bestimmt, ob sie eine Erregung oder eine Hemmung
auslösen und ob Ca2+ in ausreichenden Mengen in die Zelle gelangt.
◦ Die Leitfähigkeit des offenen Kanals bestimmt, als einer von mehreren Faktoren, die
Größe der Effekte in der postsynaptischen Zelle.
Glutamatabhängige Kanäle (Glutamate-Gated Channels):
• Subtypen (benannt nach ihren Agonisten):
◦ AMPA, NMDA, Kainat.
◦ AMPA- und NMDA-abhäng. Kanäle...schnelle exzitatorische Synapsenübertragung
◦ Kainat-Rezeptoren kommen überall im Gehirn vor, aber Funktion noch nicht geklärt.
◦ AMPA- und NMDA-Rezeptoren oft gemeinsam an Synapsen im Gehirn.
◦ AMPA sind für Na+ als auch für K+ permeabel jedoch nicht für Ca2+.
Nettoeffekt: Durch das Einströmen von Na+ kommt es zu einer schnellen und starken
Depolarisation. (genauso wie bei nikotischen ACH-Rezeptoren)
◦ NMDA: ebenfalls Na+ durchlässig aber zwei große Unterschiede:
▪ sie sind auch für Ca2+ durchlässig → langfristige Veränderungen
▪ einwärts gerichteter Ionenstrahl ist spannungsabhängig. (neben
Transmitterabhängigkeit)
◦ NMDA: Ca2+ und Na+ strömen in die Zelle und K+ störmt aus der Zelle aus.
Aber Einwärtsstrom hängt von postsynap. Membranpotenzial ab. → bei normalem
Ruhepotenzial blockiert Mg2+ die Ionen.(=Magnesiumblocker) Erst bei Depolarisation
(wenn sich AMPA-Kanäle öffnen) verlässt Mg2+ die Pore.
• Ca2+ :
◦ löst Freisetzung von Neurotransmittern aus
◦ (Postsynaptisch) Enzyme aktivieren
◦ Öffnen verschiedener Kanäle regulieren
◦ Genexpression beeinflussen
◦ im Übermaß: Tod einer Zelle auslösen

10. Kapitel 6 Teil 2 4/9
[Übererregung: Gift für Nervenzellen (Of Special Interest: The Brain´s Exciting Poisons)
• Neuronen des Gehirns regenerieren sich nicht.
• Glutamat, der wichtigste Neurotransmitter im Gehirn ist auch einer der wirksamsten
Zerstörer von Neuronen.
• Glutamat in allen Zellen enthalten, nur in Zellen wo es nicht als Neurotransmitter genutzt
wird in niedriger Konzentration. Aber selbst dort ist die Konzentration sehr hoch.
• Isolierte Neuronen die von außen einer so hohen Glutamatkonzentration ausgesetzt sind
sterben innerhalb weniger Minuten ab.
• Das Gehirn benötigt eine ständige Sauerstoffzufuhr. Ist die Blutversorgung unterbrochen
stellen die Neuronen innerhalb weniger Sekunden ihre Tätigkeit ein, zu dauerhaften Schäden
kommt es innerhalb weniger Minuten.
• Sauerstoffmangel, Hirnschlag, Herzstillstand,... → Neuronen können nicht genug ATP
regenerieren → Depolarisation der Membran → Ca2+ gelangt in die Zelle → Ausschüttung
von Glutamat → Depolarisation der Membran → …
Außerdem kann auch der Glutamattransport umgekehrt werden → Austritt von Glutamat aus
Zelle
• Exzitotoxizität (exzitatorisch = anregend und toxisch = giftig.) Glutamat in hohen
Konzentrationen tötet Neuronen ab in dem es sie zu sehr erregt.
◦ Glutamat aktiviert Rezeptoren → Einströmung von großen Mengen Na+, K+ und Ca2+ →
(NMDA-Kanal spielt zentrale Rolle da er der Hauptweg der Ca2+ Zufuhr ist.)
◦ Zur Schädigung oder Absterben kommt es wenn das Neuron durch die Aufnahme von
Wasser anschwillt und Ca2+ -Ionen Enzyme in der Zelle stimuliert die Proteine, Lipide
und Nucleinsäure abbaut.
• → Neurodegenerative Krankheiten:
◦ amyotrophe Lateralsklerose (ALS) … betrifft Motoneuronen des Rückenmarks
◦ Alzheimer-Krankheit … betrifft Neuronen im Gehirn
• → Umweltgifte:
◦ Kichererbsen → Lathyrismus: Degenerierung motorischer Neuronen
◦ vergiftete Muscheln → Domoinsäure: Krampfanfälle Gehirnschäden
◦ Pflanzengift β-Methylaminoalanin: Symptome von ALS, Alzheimer und Parkinson]
GABA-abhängige und glycinabhängige Kanäle (GABA-Gated and Glycine-Gated Channels):
• GABA vermittelt den größten Anteil der synaptischen Hemmungen im ZNS und Glycin den
größten Teil der übrigens Hemmung.
• GABAA und Glycin-Rezeptor ähnliche Struktur wie nikotinischer ACh-Rezeptor aber für
Anionen (Cl-) selektiv → α (die den Transmitter binden) und β Untereinheiten
• übermäßige Hemmung → Bewusstlosigkeit, Koma
• zu geringe Hemmung → Krampfanfällen.
• Es gibt neben GABA (nicht Glycin) auch noch für andere Moleküle Bindungsstellen:
◦ Benzodiazepine (Wirkstoff-Klasse; Vertreter z.B.: Diazepam, Valium,...)
◦ Barbiturate (Wirkstoff-Klasse; Vertreter sind Sedativer und Krampf lösende Mittel)
◦ alleine haben sie nur geringe Wirkung aber zusammen mit GABA erhöhen sie die
Frequenz mit der sich der Kanal öffnet (Benzodiazepine), oder verlängern die Zeit die
der Kanal geöffnet ist (Barbiturate). → vermehrter inhibitorischer CL- Strom →
stärkeres IPSP → stärkere Hemmung
◦ Ethanol: (Alkohol in Getränken) komplexe Funktion, verstärkt in bestimmten
Hirnregionen die Hemmung aber in anderen nicht.

11. Kapitel 6 Teil 2 5/9
• Diese künstlichen Wirkstoffe geben Hinweis darauf, dass es auch natürliche NT eben muss
die an diese Stellen binden können.
• Mögliche Kandidaten die als Modulatoren für GABAa-Rezeptoren dienen könnten sind
Neurosteroide (natürliche Metabolite von Steroidhormonen). Einige davon verstärken die
inhibitorische Funktion andere unterdrücken sie.
G-Protein-gekoppelte Rezeptoren und Effektoren (G-Protein Coupled Receptors and
Effectors)
G-Protein-gekoppelte Rezeptoren (The Basic Structure of G-Protein-Coupled Receptors)
Sie sind alle Varianten eines gemeinsamen Bauprinzips.
• Sie bestehen alle aus einem einzigen Polypeptid, das sieben die Membran durchspannende
Alpha-Helices enthält.
• Zwei der extrazellulären Schleifen des Polypeptids bilden die Transmitterbindungsstellen,
Strukturelle Varianten bestimmen, welche NT, Antagonisten und Agonisten binden können.
• Zwei der intrazellulären Schleifen können G-Proteine binden und aktivieren.
• Strukturelle Varianten bestimmen welche G-Proteine und Effektorsysteme aktiviert werden.

12. Kapitel 6 Teil 2 6/9
Weite Verbreitung der G-Proteine (The Ubiquitous G-Proteins):
• Abkürzung für Guanosintrophosphat- (GTP-) bindendes Protein
• 20 verschiedene Typen
• ein G-Protein kann von mehreren Rezeptoren aktiviert werden
• 2 Einteilungen:
◦ stimulierende G-Proteine (Gs): aktivieren Effektorproteine
◦ inhibitorische G-Proteine (Gi): hemmen Effektorproteine
• drei Untereinheiten (α,β,γ)
• alle haben den selben Funktionsmechanismus:
◦ Im Ruhezustand ist an die Gα-Untereinheit ein Molekül Guanosindiphosphat (GDP)
gebunden und der gesamte Komplex bewegt sich entlang an der inneren Oberfläche der
Membran.
◦ G-Protein mit GDP stößt auf einen zugehörigen Rezeptor mit gebundenem
Transmittermolekül
◦ → das G-Protein tauscht GDP gegen ein GTP aus dem Cytosol aus.
◦ Das G-Protein mit GTP teilt sich dann in zwei Fragmente, eine Gα-Untereinheit mit GTP
und einen Gβγ-Komplex beide können sich nun weiterbewegen und verschiedene
Effektorproteine beeinflussen.
◦ Gα-Untereinheit ist selbst ein Enzym, das seine eigene Aktivität abschaltet, indem es das
gebundene GTP in GDP umwandelt.
◦ Gα und Gβγ vereinigen sich wieder.

13. Kapitel 6 Teil 2 7/9
G-Protein-gekoppelte Effektorsysteme (G-Protein-Coupled Effector Systems):
zwei Typen Effektorproteine:
• G-Proteine-abhängige Ionenkanäle („verkürzter Signalweg“)
• G-Proteine aktivierte Enzyme
Verkürzter Signalweg (The Shortcut Pathway):
• Bsp.: muscarinische Rezeptoren im Herzen: (verringern die Herzfrequenz)
◦ Ach-Rezeptoren sind über G-Proteine an Kaliumkanäle gekoppelt
• die schnellsten Signalwege im G-Protein-gekoppelten Effektoren -System (30-100ms nach
Bindung eines NT) und schneller als Second Messenger Kaskaden, aber sie sind langsamer
als ligandengesteuerte Kanäle.
• räumlich stark begrenzte Wirkung (nur nahe Kanäle beeinflusst)
Second Messenger Kaskaden (Second Messenger Cascades):
• G-Proteine können bestimmte Enzyme direkt aktivieren.
• = Vorgang der den NT über mehrere Schritte mit der Aktivierung eines nachgeschalteten
Enzyms verknüpft.
• Oder anders gesagt: eine komplexe Reihe biochemischer Reaktionen die häufig zur
Aktivierung weiterer Enzyme führt.
• Zwischen dem ersten und letzten Enzym liegen mehrere Second Messenger.
• „Push-Pull-Prinzip“: Prozesse von einem Effekt stimuliert und von anderem gehemmt.
• Bsp.: Second Messenger Kaskade von cAMP:
◦ durch Aktivierung des NA-β-Rezeptors ausgelöst
→ aktiviert stimulatorische G-Protein (Gs)
→ stimuliert das membrangebundene Enzym Adenylatcyclase
→ wandelt ATP in cAMP um → Zunahme von cAMP im Cytosol
→ aktiviert nachgeschaltetes Enzym: Proteinkinase A (PKA)
◦ Aktivierung von NA- α2-Rezeptor
→ inhibitorisches G-Protein (Gi)
→ hemmt Adenylatcyclase
→ kann stimulatorisches Gs überwiegen und Effekt verhindern
• Second Messenger Kaskade können sich auch verzweigen
• Bsp.: Phospholipase C (PLC; in Membran bewegliches Enzym wie Adenylatcyclase)
→ wirkt auf Membranphospholipid (PIP2) und spaltet es in 2 Second Messenger Moleküle...
◦ ...Diacylglycerin (DAG; fettlöslich → verbleibt in Membranebene)
→ aktiviert nachgeschaltete Proteinkinase C (PKC)

14. Kapitel 6 Teil 2 8/9
◦ ...Inositol-1,4,5-Trisphosphat (IP3 ; wasserlöslich → diffundiert in Cytosol)
→ bindet an IP3-abhängige Ca2+-Kanäle von Organellenmembranen
→ Organellen entleeren ihre Ca2+ Speicher → Erhöhung von Ca2+ im Cytosol
→ Aktiviert das Enzym Calcium-Calmodulin-abhängige Proteinkinase
(CaMK) → CaMK hat u.a. Einfluss auf das Gedächtnis.
Phosphorylierung und Dephosphorylierung
bei vielen Second Messenger Kaskaden sind die aktivierten Enzyme Proteinkinasen (PKA, PKC,
CaMK) diese übertragen Phosphatgruppen von dem im Cytosol frei beweglichen ATP auf Proteine.
Dies bezeichnet man als Phosphorylierung → Phosphorylierung bei Ionenkanälen z.B kann die
Wahrscheinlichkeit stark verändern, ob sie sich öffnen oder schließen.
Die Umkehrung, Dephosphorylierung, wird bewirkt durch Enzyme, die Phosphatasen, welche in
der Lage sind Phosphatgruppen schnell zu entfernen.
Vorteil/Funktion der Signalkaskaden:
• komplexer langsamer Vorgang, welcher aber das Signal (auf mehreren Stufen) verstärken
kann.
• Bsp: Aktivierung eines G-Protein gekoppelten Rezeptors → Aktivierung vieler Ionenkanäle
◦ ein NT-Molekül das an einen Rezeptor bindet → aktiviert 10-20 G-Proteine
◦ ein G-Protein → aktiviert ein Adenylatcyclase → zahlreiche cAMP-Moleküle erzeugt
→ Aktivierung vieler (Protein-)Kinasen → Phosphorylierung vieler Kanäle
• Wirkung auf größeren Membranbereich
• viele Möglichkeiten für weitere Regulierungen
• Wechselwirkungen zwischen verschiedenen Kaskaden möglich
• langfristige chemische Veränderungen von Zellen → z.B. Erinnerungen

15. Kapitel 6 Teil 2 9/9
Divergenz und Konvergenz in Neurotransmittersystemen
• Glutamat ist der häufigste exzitatorische NT aber ...
• GABA ist der vorherrschende inhibitorische NT aber ...
• … Divergenz: Fähigkeit der NT mehr als einen Subtyp von Rezeptoren zu aktivieren und
mehr als eine synaptische Reaktion auszulösen. Divergenz ist die Regel unter NT.
Sie kann auf jeder Stufe der Kaskade der Transmittereffekte auftreten, z.B. G-Proteine und
Effektorsysteme.
• Konvergenz: Mehrere NT die jeweils ihren eigenen Rezeptortyp aktivieren, können
zusammentreffen und gemeinsam auf das selbe Effektorsystem einwirken.
• Möglich auf der Ebene der: G-Proteine, Second Messenger Kaskaden oder beim Typ des
modellierten Ionenkanals auftreten.
• Neuronen können divergente und konvergente Neuronensysteme integrieren.