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Área de Biotecnología de la
                     Reproducción Animal
                    Facultad de Veterinaria
                              2011


Área Biotecnología de la Reproducción – Departamento de Reproducción Animal
   1989: primeros terneros nacidos por FIV en
    Latinoamérica… (amplia difusión)
Pronúcleos masculino y femenino
Día         Etapas
Semana      Preparación del laboratorio           Desinfección de superficies;
previa al                                         esterilización de materiales; preparación
trabajo                                           de soluciones stock
0           Colecta de ovarios                    Transporte en solución salina a 37ºC
            Aspiración de los COC (Complejos      Medio de aspiración: Solución m-PBS
            ovocito cúmulus)                      (Buffer Fosfato Salino modificado: D-PBS
                                                  (+) + SFb + Atb)

            Recuperación y clasificación de los   Bajo lupa estereoscópica
            COC
            Maduración In Vitro                   Medio de maduración: TCM-199 + SFb +
                                                  LFb + Atb
1           Capacitación del semen y dilución     Medio BO de capacitación y lavado de
                                                  semen; medio BO de dilución de semen
                                                  (ajuste a concentración deseada)
            Fecundación In Vitro                  Gotas en placas de Petri pequeñas
            Desarrollo In Vitro                   Medio de desarrollo: CR1aa
3           Clivaje                               Evaluación de división celular a las 48 hs
4 - 10      Evaluación de desarrollo y cambio     Cada 48 horas
            de medio
   De animales muertos: material de matadero o
    hembras recién muertas
       Aspiración del líquido folicular (folículos de 2 a 8 mm
        de diámetro)
       Desmenuzamiento del ovario (slicing)
   De hembras vivas
       OPU, aspiración con aguja guiada por ultrasonografía
       Aspiración con aguja y endoscopía
       Laparotomía (usada sólo en casos especiales)
Folículo
            primordial

                         Folículo   Folículo           Folículo
            Folículo
                         Secundario Terciario          de Graaf
            primario



Túnica
albugínea


Epitelio
                                                                  Corpus
germinal
                                                                  albicans

                                                                  Folículo
                                                                  atrésico


                            Hilio
            Cuerpo                              Células
            lúteo                               intersticiales
P   PM   S       T   T   PO




P        PM       S       T
PO
   m-PBS: Buffer Fosfato Salino modificado
       Consiste en:
         D-PBS (+) – solución stock
         Penicilina – Estreptomicina
         SFb (suero fetal bovino)




COMPOSICIÓN DEL MEDIO PBS:
NaCl             8,00    g/l
KCl              0,20    g/l
KH2PO4           0,20    g/l
Na2HPO4          1,15    g/l
MgCl26H2O        0,10    g/l
CaCl2            0,10    g/l
Calidad      Características a evaluar


A   Bueno        Completamente rodeado por más de 3 capas de
                 células del cúmulus y citoplasma homogéneo


B   Regular      Rodeado parcialmente por células del cúmulus


C   Malo         Desnudo y citoplasma irregular


D   Degenerado   Rodeado por fibrina (con aspecto de tela de araña)


                               (Liebfried L and First N L, 1979; Sato E y col, 1990)
   Medio de maduración: M-TCM-199
                     (TCM-199 de maduración)
        Consiste en:
          TCM-199 (solución stock)
          Penicilina – Estretomicina
          SFb (suero fetal bovino)
          LFb (licor folicular bovino)



LFb: se obtiene de folículos preovulatorios, de más de 8 mm de diámetro, y se
transfiere a tubos de centrifuga. Se centrifuga a 800 G (2.500 rpm) durante 30
minutos. Se decanta. El liquido sobrenadante se inactiva en baño Maria a 56 ºC
durante 30 minutos; se fracciona en tubos pequeños o crioviales y se almacena
congelado.
m-PBS   m-PBS              M-TCM-199    M-TCM-199
                                                      GOTAS DE
                                                     MADURACIÓN
                                                      M-TCM-199
                                                    CUBIERTAS CON
                                                        ACEITE
                                                       MINERAL


                                22 hs
                                cultivo

                Caja de Petri numerada con gotas de maduración,
                 cubiertas con aceite mineral (3 gotas de 100 µ)
   Preparación citoplasmática
   Preparación nuclear
       Retoma la meiosis. Desde Profase I (estado de
        latencia, Dictioteno), se detiene nuevamente en la
        Metafase II.
       Formación del primer cuerpo polar
   Expansión de las células del cúmulus
Ovocito Primario  Profase de la Meiosis I
              (pausa = dictioteno)

     Maduración citoplasmática y nuclear

Ovocito Secundario  Metafase de la Meiosis II

                 Fertilización

             Completa la Meiosis
Ovocitos inmaduros




                     •OVOCITOS MADUROS
                     •Expansión de células del
                     cúmulus
                     • 1º cuerpo polar
                     • Metafase II
   La capacitación permite:
       Adquirir hipermotilidad para avanzar por el mucus
        oviductal
       Penetrar el cúmulus
       Prepararse para la reacción acrosómica
   Bioquímica de la capacitación:
     Aumento del pH
     Aumento de la permeabilidad al calcio
     Fusión de membranas
     Interacciones con glucosaminoglicanos
     Cambio en la relación colesterol/fosfolíidos
   Ornitina-decarboxilasa
   Fosfolipasa A
   Fosfolipasa C
   L-Fucosidasa
   -Galactosidasa
   -Glucoronidasa
   Hialuronidasa
   Peptil-peptidasa
   -N-acetilhexosaminidasa
   Acrosina
   Arilaminidasa
   Colagenasa
   Proacrosina
   Neuroaminidasa
   Estearasas
   Fosfatasas
COMPOSICIÓN DE SOLUCIÓN BÁSICA BO (Bracket and Oliphant):

   Solución A
   NaCl               2,1546 g     Solución B
   KCl                0,0987 g     NaHCO3         1,2937 g
   Na2PO42H2O         0,0420 g     Rojo Fenol     20 µl
   MgCl26H2O          0,03485 g    Agua ultrapura hasta 100 ml
   CaCl22H2O          0,1085 g
   Rojo Fenol (0,5%) 50 µl         La solución B se burbujea con CO2
   Agua ultrapura hasta 500 ml


COMPOSICIÓN DEL MEDIO BO:
   Solución A          76 ml
   Piruvato de Sodio   0,01375 g
   Penicilina          10.000 UI
   Estreptomicina      10 mg
   Solución B          24 ml
   Lavado de semen
       BO + Cafeína + Heparina


   Lavado de ovocitos
       BO + BSA (albúmina de suero bovino) (10 mg/ml)


   Dilución de semen
       BO + BSA (20 mg/ml)
   Platina caliente (35 ºC) y Baño María (35 ºC)
   Descongelación de la pajuela de semen:
       10 seg. a temp. ambiente
       30 seg. a baño María (35 ºC)
   Colocar el semen en tubo de centrífuga (gota en portaobjetos -sobre la platina-
    para evaluación)
   Se agregan 6 ml de sol BO de lavado de semen
   Centrifugar a 500 G (2000 rpm, dependiendo del diámetro de la centrífuga), 5
    min.
   Aspirar sobrenadante
   Nuevamente se agregan 6 ml de sol BO de lavado de semen
   Centrifugar a 500, 5 min.
   Aspirar sobrenadante
   Diluir el pellet en sol. BO de dilución de semen
    Vol i x [ i ] = Vol f
        [f]
PREPARACIÓN DEL SEMEN
                            Remover la capa superior     Agregar 6 ml de BO de
                                                         lavado de semen y re-
                                                         centrifugar a 500 G, 5 min.




6 ml sol BO
de lavado
de semen
                                                          Luego de 2 lavados
     Semen                                                retirar sobrenadante
     (0,5 ml)                                             y dejar pellet




                                               Capa espermática




    Cámara de Neubauer (calcular concentración)
DILUCIÓN DE SEMEN Y
PREPARACIÓN DE GOTAS DE INSEMINACIÓN

                              Gotas de inseminación
                              100 µl de espermios en BO
                              cubiertas con aceite mineral
        Agregar BO
        de dilución
        de semen
        (Vol.
        calculado)




                                              FECUNDACIÓN

          Vol i x [ i ] = Vol f
              [f]                              Incubación 5 h
1


C                   2
    1

                        2


        3                   3
            4




                                Incubación 5 h
                                   5% CO2
                                    38 ºC
BO 40 ml + BSA 400 mg


            Lavado
                                         Al medio de inseminación
                                         (BO) en las gotas de semen
                          Lavado         cubierto por aceite mineral




               BO + BSA

                              BO + BSA




                                                  5 hs
                                                  cultivo
FECUNDACIÓN
TCM 199 + 5 % SFb + ANTIBIÓTICOS

                                        cultivo

            Lavado



                         Lavado
                                       Al medio de cultivo
BO                                     (TCM-199) cubierto
                                       por aceite mineral

              TCM-199

                             TCM-199
1 célula             2 células              4 células
                                                                      16 células
 día 0-1                día 2                 día 2-3    1 célula      día 4-5
                                                         día 0-1




 8 células           16 células      Mórula temprana                   Mórula
                                                         2 células    compacta
  día 2-4             día 4-5            día 5-6
                                                           día 2       día 6-7




Mórula compacta   Blastocisto temprano     Blastocisto                Blastocisto
                                                         4 células    temprano
    día 6-7               día 7              día 7-8
                                                          día 2-3        día 7




                                                          8 células   Blastocisto
  Blastocisto       Blastocisto           Blastocisto
                                                           día 2-4      día 7-8
  expandido        eclosionando          eclosionado
    día 8-9            día 9                día 10
¿POR QUÉ?
¿PARA QUÉ?
¿CON QUÉ?
Fertrilización In
Vitro en Bovinos



          Área de Biotecnología de la
             Reproducción Animal
           Facultad de Veterinaria
                     2011


                              Yael Filipiak
                              Clara Larocca

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Fertilización In Vitro en bovinos

  • 1. Área de Biotecnología de la Reproducción Animal Facultad de Veterinaria 2011 Área Biotecnología de la Reproducción – Departamento de Reproducción Animal
  • 2.
  • 3.
  • 4. 1989: primeros terneros nacidos por FIV en Latinoamérica… (amplia difusión)
  • 5.
  • 7. Día Etapas Semana Preparación del laboratorio Desinfección de superficies; previa al esterilización de materiales; preparación trabajo de soluciones stock 0 Colecta de ovarios Transporte en solución salina a 37ºC Aspiración de los COC (Complejos Medio de aspiración: Solución m-PBS ovocito cúmulus) (Buffer Fosfato Salino modificado: D-PBS (+) + SFb + Atb) Recuperación y clasificación de los Bajo lupa estereoscópica COC Maduración In Vitro Medio de maduración: TCM-199 + SFb + LFb + Atb 1 Capacitación del semen y dilución Medio BO de capacitación y lavado de semen; medio BO de dilución de semen (ajuste a concentración deseada) Fecundación In Vitro Gotas en placas de Petri pequeñas Desarrollo In Vitro Medio de desarrollo: CR1aa 3 Clivaje Evaluación de división celular a las 48 hs 4 - 10 Evaluación de desarrollo y cambio Cada 48 horas de medio
  • 8. De animales muertos: material de matadero o hembras recién muertas  Aspiración del líquido folicular (folículos de 2 a 8 mm de diámetro)  Desmenuzamiento del ovario (slicing)  De hembras vivas  OPU, aspiración con aguja guiada por ultrasonografía  Aspiración con aguja y endoscopía  Laparotomía (usada sólo en casos especiales)
  • 9. Folículo primordial Folículo Folículo Folículo Folículo Secundario Terciario de Graaf primario Túnica albugínea Epitelio Corpus germinal albicans Folículo atrésico Hilio Cuerpo Células lúteo intersticiales
  • 10. P PM S T T PO P PM S T PO
  • 11. m-PBS: Buffer Fosfato Salino modificado  Consiste en:  D-PBS (+) – solución stock  Penicilina – Estreptomicina  SFb (suero fetal bovino) COMPOSICIÓN DEL MEDIO PBS: NaCl 8,00 g/l KCl 0,20 g/l KH2PO4 0,20 g/l Na2HPO4 1,15 g/l MgCl26H2O 0,10 g/l CaCl2 0,10 g/l
  • 12.
  • 13.
  • 14.
  • 15.
  • 16.
  • 17. Calidad Características a evaluar A Bueno Completamente rodeado por más de 3 capas de células del cúmulus y citoplasma homogéneo B Regular Rodeado parcialmente por células del cúmulus C Malo Desnudo y citoplasma irregular D Degenerado Rodeado por fibrina (con aspecto de tela de araña) (Liebfried L and First N L, 1979; Sato E y col, 1990)
  • 18.
  • 19. Medio de maduración: M-TCM-199 (TCM-199 de maduración)  Consiste en:  TCM-199 (solución stock)  Penicilina – Estretomicina  SFb (suero fetal bovino)  LFb (licor folicular bovino) LFb: se obtiene de folículos preovulatorios, de más de 8 mm de diámetro, y se transfiere a tubos de centrifuga. Se centrifuga a 800 G (2.500 rpm) durante 30 minutos. Se decanta. El liquido sobrenadante se inactiva en baño Maria a 56 ºC durante 30 minutos; se fracciona en tubos pequeños o crioviales y se almacena congelado.
  • 20. m-PBS m-PBS M-TCM-199 M-TCM-199 GOTAS DE MADURACIÓN M-TCM-199 CUBIERTAS CON ACEITE MINERAL 22 hs cultivo Caja de Petri numerada con gotas de maduración, cubiertas con aceite mineral (3 gotas de 100 µ)
  • 21.
  • 22. Preparación citoplasmática  Preparación nuclear  Retoma la meiosis. Desde Profase I (estado de latencia, Dictioteno), se detiene nuevamente en la Metafase II.  Formación del primer cuerpo polar  Expansión de las células del cúmulus
  • 23. Ovocito Primario  Profase de la Meiosis I (pausa = dictioteno) Maduración citoplasmática y nuclear Ovocito Secundario  Metafase de la Meiosis II Fertilización Completa la Meiosis
  • 24. Ovocitos inmaduros •OVOCITOS MADUROS •Expansión de células del cúmulus • 1º cuerpo polar • Metafase II
  • 25.
  • 26. La capacitación permite:  Adquirir hipermotilidad para avanzar por el mucus oviductal  Penetrar el cúmulus  Prepararse para la reacción acrosómica  Bioquímica de la capacitación:  Aumento del pH  Aumento de la permeabilidad al calcio  Fusión de membranas  Interacciones con glucosaminoglicanos  Cambio en la relación colesterol/fosfolíidos
  • 27. Ornitina-decarboxilasa  Fosfolipasa A  Fosfolipasa C  L-Fucosidasa  -Galactosidasa  -Glucoronidasa  Hialuronidasa  Peptil-peptidasa  -N-acetilhexosaminidasa  Acrosina  Arilaminidasa  Colagenasa  Proacrosina  Neuroaminidasa  Estearasas  Fosfatasas
  • 28.
  • 29.
  • 30. COMPOSICIÓN DE SOLUCIÓN BÁSICA BO (Bracket and Oliphant): Solución A NaCl 2,1546 g Solución B KCl 0,0987 g NaHCO3 1,2937 g Na2PO42H2O 0,0420 g Rojo Fenol 20 µl MgCl26H2O 0,03485 g Agua ultrapura hasta 100 ml CaCl22H2O 0,1085 g Rojo Fenol (0,5%) 50 µl La solución B se burbujea con CO2 Agua ultrapura hasta 500 ml COMPOSICIÓN DEL MEDIO BO: Solución A 76 ml Piruvato de Sodio 0,01375 g Penicilina 10.000 UI Estreptomicina 10 mg Solución B 24 ml
  • 31. Lavado de semen  BO + Cafeína + Heparina  Lavado de ovocitos  BO + BSA (albúmina de suero bovino) (10 mg/ml)  Dilución de semen  BO + BSA (20 mg/ml)
  • 32. Platina caliente (35 ºC) y Baño María (35 ºC)  Descongelación de la pajuela de semen:  10 seg. a temp. ambiente  30 seg. a baño María (35 ºC)  Colocar el semen en tubo de centrífuga (gota en portaobjetos -sobre la platina- para evaluación)  Se agregan 6 ml de sol BO de lavado de semen  Centrifugar a 500 G (2000 rpm, dependiendo del diámetro de la centrífuga), 5 min.  Aspirar sobrenadante  Nuevamente se agregan 6 ml de sol BO de lavado de semen  Centrifugar a 500, 5 min.  Aspirar sobrenadante  Diluir el pellet en sol. BO de dilución de semen Vol i x [ i ] = Vol f [f]
  • 33. PREPARACIÓN DEL SEMEN Remover la capa superior Agregar 6 ml de BO de lavado de semen y re- centrifugar a 500 G, 5 min. 6 ml sol BO de lavado de semen Luego de 2 lavados Semen retirar sobrenadante (0,5 ml) y dejar pellet Capa espermática Cámara de Neubauer (calcular concentración)
  • 34. DILUCIÓN DE SEMEN Y PREPARACIÓN DE GOTAS DE INSEMINACIÓN Gotas de inseminación 100 µl de espermios en BO cubiertas con aceite mineral Agregar BO de dilución de semen (Vol. calculado) FECUNDACIÓN Vol i x [ i ] = Vol f [f] Incubación 5 h
  • 35. 1 C 2 1 2 3 3 4 Incubación 5 h 5% CO2 38 ºC
  • 36. BO 40 ml + BSA 400 mg Lavado Al medio de inseminación (BO) en las gotas de semen Lavado cubierto por aceite mineral BO + BSA BO + BSA 5 hs cultivo
  • 38. TCM 199 + 5 % SFb + ANTIBIÓTICOS cultivo Lavado Lavado Al medio de cultivo BO (TCM-199) cubierto por aceite mineral TCM-199 TCM-199
  • 39.
  • 40. 1 célula 2 células 4 células 16 células día 0-1 día 2 día 2-3 1 célula día 4-5 día 0-1 8 células 16 células Mórula temprana Mórula 2 células compacta día 2-4 día 4-5 día 5-6 día 2 día 6-7 Mórula compacta Blastocisto temprano Blastocisto Blastocisto 4 células temprano día 6-7 día 7 día 7-8 día 2-3 día 7 8 células Blastocisto Blastocisto Blastocisto Blastocisto día 2-4 día 7-8 expandido eclosionando eclosionado día 8-9 día 9 día 10
  • 41.
  • 42.
  • 43.
  • 45. Fertrilización In Vitro en Bovinos Área de Biotecnología de la Reproducción Animal Facultad de Veterinaria 2011  Yael Filipiak  Clara Larocca