1. LABORATORIO CLINICO
INGRID JOHANA VARGAS
ENFERMERA

2. RECOMENDACIONES PARA LA MUESTRA
 Ser
amable, saludar y sonreír.
 Saber qué cantidad de muestras se necesita y que
especificaciones debe tener la muestra.
 Hacer que el paciente y los familiares se sientan
cómodos, el lugar de toma de muestras debe ser
agradable, con suficiente luz, espacios y
ventilación.
 El profesional que toma la muestra debe transmitir
seguridad y profesionalismo en el procedimiento
que va a realizar.
 Respetar las normas de bioseguridad.

3. ANTICOAGULANTES
 Los
anticoagulantes son sustancias que
como su nombre lo dice previenen la
realización del proceso de coagulación,
existen diferentes tipos de ellos, en polvo
o líquidos, debe seleccionarse siempre el
tipo de anticoagulante apropiado para
el estudio que se va a realizar y la
adecuada proporción de anticoagulante
sangre.

4. ANTICOAGULANTES
 Excepto
la heparina, qué actúa impidiendo
la acción de la trombina, los otros
anticoagulantes fijan el calcio y evitan la
coagulación sanguínea.
 No alterar el volumen de los eritrocitos
 No producir hemolisis.
 Evitar la agregación de
las plaquetas.
 No alterar la morfología de
los glóbulos rojos.

5. ANTICOAGULANTES




EDTA: ETILEN-DIAMINO-TETRA-ACETATO. Es el
anticoagulante usado para la realización de
cuadros hemáticos, debido a que conservan
mejor la morfología sanguínea.
CITRATO DE SODIO: Es al anticoagulante a
elección para la determinación de la
velocidad de sedimentación y para las pruebas
de coagulación.
HEPARINA: Generalmente se emplea para
exámenes especializados.
OXALATO: Se utiliza con menos frecuencia y es
recomendado igual que el citrato de sodio
para las pruebas de hemostasia

6. TUBOS DE RECOLECCION
 Cada
tubo trae anticoagulante
requerido, tener en cuenta fecha de
caducidad, manera de mezclar, entre
otros.

7. CODIGO DE COLORES
COLOR
ANTICOAGULANTE
Tapa roja:
Sin anticoagulante(tubo seco)
Tapa lila:
con EDTA (cuadros hemáticos)
Tapa azul:
con citrato de
sodio(coagulación)
Tapa verde o blanca:
con heparina
Tapa gris:
con oxalato
Tubos separadores de suero, los cuales contienen un gel que
permite separar el suero de las células sanguíneas.

8. RECOMENDACIONES PARA LA
RECOLECCIÓN DE MUESTRAS
 Orden
medica.
 Atención al paciente: explicar
procedimiento, consentimientos, cuando
reclamar resultados.
 rotular

9. SELECCIÓN DEL SITIO DE
VENOPUNCIÓN



vena cefálica: ubicadas en la parte superior
del antebrazo y del lado del pulgar en la
mano
vena basílica, ubicada en la parte inferior
del antebrazo y del lado del dedo meñique
de la mano.
vena cubital mediana, que conecta las
venas basílica y cefálica en la fosa ante
cubital (flexión del codo) y es la vena de
elección

10. SELECCIÓN DEL SITIO DE
VENOPUNCIÓN

11. PROCEDIMIENTO.
Posición
cómoda y
segura.
•ROTULO: nombre del paciente, número de
identificación, fecha, examen a realizar, en
pacientes hospitalizados se debe anotar el
número de la historia clínica, servicio y cama.
No canalizar en
Venopunción,
lesiones o
hematomas.
•Vena visible y fácil de palpar.
•Limpiar el sitio de la Venopunción con alcohol,
con círculos concéntricos desde el centro
hacia la periferia. DEJAR SECAR AL AIRE.
Torniquete de 5
a 10cm por
encima del sitio
•Realizar la venopunción con la fijación de la
vena con el dedo pulgar 2.5 a 5 cm por debajo
del sitio e insertar la aguja con el bisel hacia
arriba con un ángulo de 15 grados entre la
aguja y la piel.

12. ORDEN DE LA TOMA
TAPÓN
CONTENIDO DEL TUBO
ÁREA DE USO
MEZCLADO
Hemocultivo
Botella
Microbiología
5 veces
Citrato de sodio
Azul
Pruebas de coagulación
3 a 4 veces
Tubo con gel separador
Amarillo
Química clínica
5 veces
Sin anticoagulante
silicón
con Rojo
Química clínica, banco de 5 veces
sangre, serología
Heparina sodio/litio
verde
Química clínica
EDTA
Lila
Hematología,
sangre
8 a 10 veces
banco
de 8 a 10 veces

13. Hacer
presión y
busque
ayuda.
DESECHOS
Colocar
algodón,
doblar
brazo y
abra
mano
NO PARA SANGRE
FINAL DE PROC.
ORDEN DE LA TOMA
De
acuerdo
a norma
universal.

15. CUIDADOS DE ENFERMERIA
SI SE DESMAYA:
 Retirar inmediatamente el torniquete y la aguja del
lugar de la punción
 Sostener el paciente con fuerza para evitar que se
caiga y se golpee, solicitar ayuda a las personas que
estén cerca.
 Colocar sobre el lugar de la Venopunción un apósito
y sostenerlo con presión para evitar que siga
sangrando.
 Acostar al paciente en el suelo o en una camilla y
levantar las piernas (posición de trendelemburg).
Tener en cuenta que en el lugar debe haber
ventilación apropiada para que el paciente pueda
respirar adecuadamente.
 Colocar un algodón impregnado de alcohol en la
nariz del paciente.

16. PUNCION CAPILAR
 DEDO:
requiere mínima muestra de
sangre y no se puede puncionar en vena.
 Talón: niños y neonatos no caminantes.

17. ORDEN DE MUESTRA CAPILAR
Contenido del tubo
tapón
Área de uso
Mezclado
EDTA
lila
Hematología,
sangre
Heparina sodio/litio
verde
Química clínica
10 veces
Sin anticoagulante
rojo
Química clínica
10 veces
Con gel separador
amarillo
Química clínica
5 ve4ces
banco
de 20 veces

18. CONSERVACION DE LA
MUESTRA
 En
general se debe evitar sueros hemolizados,
lipémicos o contaminados, las enzimas y
factores de coagulación son sustancias muy
lábiles, se debe tener mucho cuidado en su
recolección y envió.
 Toda muestra se debe considerar como
potencialmente infecciosa.

19. CONSERVACION DE LA
MUESTRA

Temperatura: como norma general para la
conservación de muestras en el laboratorio, se
emplean las siguientes temperaturas:

Temperatura ambiente (18−30º C)

Temperatura de nevera (4ºC)

Temperatura de congelación (−5º C)

Generalmente cuando más baja es la temperatura,
mayor es la estabilidad (se inhiben los procesos
enzimáticos que alteran la muestra, así como el posible
crecimiento microbiano).
pH: Ciertos componentes de la sangre son mucho más
estables cuando aumenta o disminuye el pH.


20. CONSERVACION DE LA
MUESTRA

Conservación de la sangre entera:

La sangre entera puede ser conservada para un análisis hasta
4 horas sin tratamiento alguno Tanto a 20º C como a 4º C

Como norma general siempre que se pueda realizar cualquier
análisis de sangre antes de las 4 horas de su recogida.

No debe conservarse largos periodos ni siquiera a 4º C.

No es aconsejable conservarla a temperatura ambiente.

No existe ninguna sustancia química que añadida a la sangre
entera, impida la producción de modificaciones de
importancia diagnóstica significativa.

No debe ser congelada.

21. CONSERVACION DE LA
MUESTRA

Conservación de plasma y suero:

A temperatura ambiente no se debe observar
modificación alguna de los metabolitos y enzimas
durante las primeras 6 horas.

3.2 A 4ºC y en recipiente cerrado, plasma y suero
pueden ser conservados hasta 24 horas sin que
presenten modificaciones.

3.3 Si deben conservarse por más tiempo es
necesario congelarlos o liofilizarlos.

22. CONSERVACION DE LA
MUESTRA
 Conservación
de muestras de orina
 Es conveniente procesar la muestra
fresca dentro de las 2 horas de
recolectada. Se puede refrigerar (entre 4
y 8ºC) durante 8 a 12 horas.

23. CONSERVACION DE LA
MUESTRA
Conservación de muestras de materia fecal
 Materia fecal recién emitida (menos de 1 hora) en
frasco estéril y conservarla a temperatura ambiente, si
no es posible procesar la muestra esta deberá
conservarse en congelador hasta 8 Horas y/o aplicar
conservadores en plazos mayores
TRANSPORTE DE MUESTRAS
 EMPAQUE Y EMBALAJE
 TRIPLE EMPAQUE. Este sistema es el recomendado
 por la Organización Mundial de la Salud y es aplicable
a sustancias infecciosas y muestras clínicas. ES
OBLIGATORIO
 UTILIZAR EL TRIPLE EMBALAJE.

24. CONSERVACION DE LA
MUESTRA
 MUESTRA
BIOLOGICA CONTAMINANTE

25. CONSERVACION DE LA MUESTRA
MUESTRA BIOLOGICA CONTAMINANTE
TRANSPORTE
 El transporte de las muestras deberá efectuarse con el
suficiente cuidado al efecto de evitar derrames, pérdidas o
contaminación de las mismas por otras substancias, así como
posibles alteraciones debidas a acciones mecánicas,
 calentamiento excesivo o exposición a luz intensa.
CONSERVACIÓN
 En nevera de las muestras captadas sobre soportes líquidos o
sólidos adsorbentes.
 reducir en lo posible el tiempo entre la captación de las
muestras y su envío a otro Laboratorio.
 Orientación del recipiente primario
 Para evitar el derramamiento de la muestra es recomendable
que el recipiente primario esté en posición vertical.

26. CONSERVACION DE LA
MUESTRA
Temperatura
 El transporte tiene que asegurar la temperatura de conservación de las muestras.
Según su naturaleza, así como la de los constituyentes a analizar, la conservación y
transporte requerirá que estén congeladas, refrigeradas a temperatura
Tiempo de transporte
 En general, se recomienda un tiempo máximo de dos horas a partir del momento
de la obtención de la muestra.
 posible la sangre en el área de extracciones y respetar el tiempo de transporte
definido para mantener su estabilidad.
Centrifugación previa al traslado
 En el módulo de obtención de muestras se realice la separación por
centrifugación.
Presión
 Si el medio de transporte implica una variación de presión, tiene que garantizarse
la integridad de las muestras..
Orientación de los tubos
 Se recomienda que los tubos se mantengan durante el transporte en posición
vertical con el tapón en la parte
 superior, para evitar el derramamiento del contenido.