4. FIRST UP
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CARACTERÍSTICAS
MORFOLÓGICAS
4
Fig. 1. Variola virus, Animación digital. (SPL. 2020).
• 230 x 270 nm
• Cápside ovalada de conformación
compleja
• Envueltos en su mayoría
• DNA dc líneal 130-375 kpb
• RNA polimerasa dependiente de DNA
• Genes tempranos, intermedios y
tardíos
6. FIRST UP
CONSULTANTS
MECANISMOS DE PATOGENICIDAD
6
Fig. 1. Variola virus, Animación digital. (SPL. 2020).
• Vía de entrada: cutánea o
respiratoria
• Penetración de dermis e infección
sistémica
• Replicación en macrófagos
• Diseminación a ganglios linfáticos
• Primera viremia en hígado y bazo
• Segunda viremia cutánea
7. FIRST UP
CONSULTANTS
FACTORES DE VIRULENCIA
7
Fig. 1. Variola virus, Animación digital. (SPL. 2020).
• Producción de proteínas que
interfieren con la activación del
complemento
• Virocinas y viroceptores
• Producción de ligandos que evitan la
quimiotáxis e inhiben apoptosis.
9. FIRST UP
CONSULTANTS
GÉNERO: ORTHOPOXVIRUS
9
• Epizootiología:
Roedores hospederos
principales, vacas,
felinos, elefantes y
humanos
• Ciclozoonosis
• Afecta a vacas lecheras
Fig. 3. Vaca Holstein. (Oliva, E.
2015).
10. FIRST UP
CONSULTANTS
SIGNOS
10
• Morbilidad 70-90%, Mortalidad
5-10%
• Periodo de incubación: 12-21
días
• Fiebre, abatimiento,
conjuntivitis, lagrimeo.
• Erupciones cutáneas con zonas
eritematosas y se convierten
en pápulas.
• Formación de úlceras en patas
y hocico
Fig. 4. Signos de viruela
bovina. A. Pápulas que
forman nódulos y B.
Acercamiento de la
erupción cutánea.
(Marian, C. 2018).
A
B
11. FIRST UP
CONSULTANTS
NECROPSIA
11
• Edemas, vasculitis y
necrosis en epidermis y
dermis.
• Pápulas en ojos, hocico,
tráquea, rumen, abomaso,
vulva, ubre y pezones. Fig. 5. Pápulas en ubre. (Erch, R. 2018).
12. FIRST UP
CONSULTANTS
DIAGNÓSTICO
12
• Diagnóstico diferencial: neumonía
parasitaria y linfoadenitis caseosa (Sarna).
• Muestras: biopsia de piel, lesiones
pulmonares o suero.
• Aislamiento viral en embrión de pollo o
en cultivo celular. (Presencia de
inclusiones intracitoplasmáticas).
Fig. 6. Inclusiones intracitoplasmáticas
en células epiteliales ocasionadas por
poxvirus. (Vargas, D., et al. (2011).
13. FIRST UP
CONSULTANTS
DIAGNÓSTICO
13
• Serología: ELISA,
inmunofluorescencia
indirecta
• Microscopia electrónica con
tinciones negativas.
Fig. 7. Cowpox virus. Micrografía electrónica (Marian, C. 2018).
14. FIRST UP
CONSULTANTS
PREVENCIÓN Y CONTROL
14
• Eliminación adecuada de cadáveres y
desechos en la granja.
• Desinfección rigurosa
• Control del paso del ganado y de
vehículos en la explotación
• Confinamiento mínimo de 45 días
después de la recuperación por la
infección
Fig. 3. Vaca Holstein. (Oliva, E. 2015).
17. FIRST UP
CONSULTANTS
GÉNERO: CAPRIPOXVIRUS
17
Fig. 9. Hospederos susceptibles del
género Capripoxvirus. (Players, L. 2018).
• Epizootiología: Ovejas y
cabras jóvenes
• Diversidad de vías de
transmisión (respiratoria
más común)
18. FIRST UP
CONSULTANTS
SIGNOS
18
• Morbilidad hasta 75%
• Mortalidad <10% pero en
hospederos susceptibles hasta
100%
• Periodo de incubación: 4 a 21
días
• Signos: Fiebre, pápulas, nódulos
que se desprenden
• Lesiones en hocico, patas,
glándulas mamarias
• Necropsia similar a VVB
Fig. 10. Signos
característicos de
virus de viruela en
caprinos y ovinos. A.
lesiones en hocico y
B. pápulas en ubres.
(Players, L. 2018).
A
B
19. FIRST UP
CONSULTANTS
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
19
• Ectima contagioso
• Dermatofitosis
• Sarna
• Estreptotricosis
• Peste de pequeños rumiantes.
Fig. 11. Lesiones a la necropsia de virus de
viruela caprino. (Piad, C. 2004).
20. FIRST UP
CONSULTANTS
DIAGNÓSTICO
20
Fig. 11. Lesiones a la necropsia de virus de
viruela caprino. (Piad, C. 2004).
• Muestras: Biopsia, raspado de
lesiones cutáneas
• Microscopia electrónica
• Aislamiento del virus
• Inmunofluorescencia
• PCR con RFLP
• Inmunodifusión en gel de agar
(AGID)
• ELISA
• Contrainmunoelectroforésis
• Western blot
21. FIRST UP
CONSULTANTS
PREVENCIÓN Y CONTROL
21
• Limpieza y desinfección
estricta de los
establecimientos
• Eliminar adecuadamente a
los animales muertos
• Cuarentena
• Vacunación Fig. 12. Cuarentena de ovinos. (ICA. 2018).
23. FIRST UP
CONSULTANTS
GÉNERO: AVIPOXVIRUS
23
• Epizootiología: Gran
variedad de aves.
(Gallinas y pavos)
• Metazoonosis
Fig. 13. Hospederos susceptibles del virus de viruela
aviar. (Ballitsky, A. 2020).
24. FIRST UP
CONSULTANTS
SIGNOS
24
• Pápulas, pústulas, costras en
la cabeza y en las patas y
conjuntivitis
• Baja producción de huevos
• Periodo de incubación: 4-10
días
• Morbilidad 60%, Mortalidad
<50%
Fig. 14. Signos de la viruela aviar en gallinas-
(Dinev, I. 2019).
25. FIRST UP
CONSULTANTS
SIGNOS
Fig. 15. Conjuntivitis
ocasionada por viruela aviar.
(Dinev, I. 2019).
Fig. 16, costras en patas por
viruela aviar. (Dinev, I. 2019).
25
27. FIRST UP
CONSULTANTS
DIAGNÓSTICO
27
• Diferencial: Herpesvirus,
laringotraqueitis infecciosa.
• Aislamiento viral
• RFLP
• Serología: AGID,
hemaglutinación pasiva, IFI,
IFD, ELISA,
inmunoperoxidasa, western
blot.
Fig. 18. Propagación viral en embrión de pollo.
(Islas, J., et al. 2011).
28. FIRST UP
CONSULTANTS
PREVENCIÓN Y CONTROL
28
• Control de factores
ambientales
• Vacuna (virus vivo
atenuado)
Fig. 19. Vacunación contra el virus de la viruela aviar. (OIE. 2018).
29. FIRST UP
CONSULTANTS
B I B L I O G R A F Í A
29
• Estrada, C. (2019). Vacunas que se deben tener en cuenta de los primeros meses de vida para el ganado. La República, Núm. 13, Bogotá, pp. 32-37.
• Gilberto, D., et al. (2011). Avian pox virus in a common barn owl in southern Brazil. Pesquisa Veterinaria Brasileira, Vol. 31, Núm. 7, Brasil, pp. 2-4.
• Marian, C. (2018). Cowpox virus infection. Recuperado el 4 de abril de 2021 de http://www.abcdcatsvets.org/cowpox-virus-infection/
• Erch, R. (2018). La viruela en vacas: Tratamiento y síntomas. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://es.erch2014.com/biznes/4938-ospa-u-korov-lechenie-i-simptomy.html
• López, P. (2011). Viruela bovina. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://www.ecured.cu/Viruela_bovina
• Flores, C. y G. Cantón. (2015). Ciclo de replicación viral de poxvirus. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://www.researchgate.net/figure/Figura-1-Ciclo-de-replicacion-viral-de-los-
Poxvirus-a-partir-de-las-2-particulas-virales_fig1_296672013
• SPL. (2020). Small pox life cycle. Science Photo Library, UK, pp. 3404
• Adkins, J. (2000). Cowpox virus. Stanford, USA, pp. 341-343.
• ICA. (2018). Sanidad e implementación de buenas prácticas ganaderas en la producción de ovinos y caprinos. Instituto Colombiano Agropecuario, Tolima, pp. 2 y 3.
• Players, L. (2018). Peculiaridades del desarrollo de viruela en caso de derrotas de ovejas y cabras. Recuperado el 4 de abril de https://licklogplayers.org/granja/peculiaridades-del-
desarrollo-de-la-viruela-en/
• Piad, C. (2004). Útero. CFSPH, Iowa, pp. 4234.
• Sanclemente, G. y L. Correa. (2010). Poxvirus que causan enfermedad en los seres humanos. ACD, Colombia, Vol. 18, Núm. 67, pp. 67-77. Disponible en:
https://revistasocolderma.org/sites/default/files/poxvirus_que_causan_enfermedad_en_los_seres_humanos.pdf
• USDA. (2008). Virus del ovino y del caprino. CFSPH, Iowa, Disponible en: https://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/viruela_ovina_y_viruela_caprina.pdf
• Islas, J., et al. (2011). Embrión de pollo. FES, México, 52 pp.
• Shivaprasad, H. (2014). Herramientas de diagnóstico y prevención. CEU, California, 91 pp.
• News, A. (2020). Viruela aviar. Recuperado el 4 de abril de 2021 de https://avicultura.info/enfermedades/viruela-
aviar/#:~:text=Un%20diagn%C3%B3stico%20presuntivo%20puede%20realizarse,pudieran%20entregarse%20en%20mismo%20d%C3%ADa.
• Dinev, I. (2019). Diseases of poultry. Wiley, USA, 2952 pp. Disponible en: https://www.elsitioavicola.com/publications/6/enfermedades-de-las-aves/276/viruela-aviar-va/
• Ballitsky, A. (2020), Aves domésticas y tropicales. ERP, Holanda, 239 pp.
• OIE. (2018). Viruela aviar. Recuperado de https://www.oie.int/fileadmin/Home/esp/Health_standards/tahm/3.03.10_%20Viruela_aviar.pdf
