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Recuento de formas parasitarias.pdf

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  1. 1. RECUENTO DE FORMAS PARASITARIAS -Frotis directo a frotis grueso - Behaver - Kato y Miura - Kato-Katz -McMaster
  2. 2. DIAGNÓSTICO CUANTITATIVO  Se creía que la técnica era poco fiable ya que las cantidades obtenidas son variables (Beaver y col., 1986)  Heces líquidas  Heces pastosas  Heces formadas  Frotis directo y dilución de muestras son fiables por proceso de homogenización cuando se pesa la muestra como paso previo.
  3. 3. HUEVOS EN EL INTESTINO  El contenido de huevos de algunos parásitos puede variar  Los huevos de helmintos permanecen como promedio por 3 días en el intestino (algunos hasta 8 días máximo), aunque estén ubicados en la parte alta del duodeno.  La mezcla en el colon genera su distribución al azar.
  4. 4. INTENSIDAD DE PARASITACIÓN  Aunque sean una estimación, en individuos o poblaciones, es útil tener el conocimiento si una enfermedad es:  Leve  Moderada  Intensa  Importante saberlo para grupos de edades extremos (niños o adultos mayores) y estados nutricionales deficientes  Recuento de huevos de Ascaris es 4 o 5 veces mayor de para uncinarias
  5. 5. RECUENTO DE HELMINTOS Especie Infección leve Infección moderada Infección severa Adultos A. lumbricoides 1 a 4999 5000 a 49999 >50000 ÷ 2000 T. trichiura 1 a 999 1000 a 9999 >10000 ÷ 200 Uncinarias* 1 a 1999 2000 a 3999 >4000 Necator: ÷80 *depende de las especies de Uncinaria que está parasitando
  6. 6. MUESTRAS AMBIENTALES  Suelos se calcula h.p.g.  Aguas se calcula h.p.l.
  7. 7. MÉTODOS
  8. 8. FROTIS DIRECTO (BEAVER)  El frotis directo contiene aproximadamente 2 mg de heces formadas entre porta y cubre (22 x 22 mm).  El resultado del recuento se multiplica por 500 para 1g (h.p.g.)  Poco confiable a nivel cuantitativo  Diagnóstico rápido que te permite decidir aplicar o no una técnica más confiable.  Un buen frotis te permite leer a través de él.  Calibrador fotoeléctrico aumenta precisión
  9. 9. FROTIS GRUESO A KATO-KATZ  Kato y Miura: frotis grueso (1954)  Komiya Kobashi (1966): estandarizaron mundialmente  Martín y Beaver (1968): malla de tamizaje  Kato-Katz: glicerina
  10. 10. KATO-KATZ… VENTAJAS  Recomendada por la OMS  Utilizada mundialmente que permite realizar encuestas en zonas endémicas e hiperendémicas  Con resultados comparativos globales  Recuento cuantitativo  Evalúa grandes cantidades de muestras  Método de mayor sensibilidad que  Beaver  Ritchie (que tiene artefactos)
  11. 11. DIFICULTADES CON KATO-KATZ  Técnica no recomendada para  Protozoarios  Larvas de helmintos  Heces duras o líquidas  Heces con muchas microburbujas de aire o espumosas
  12. 12. KATO-KATZ HTTP://WWW.YOUTUBE.COM/WATCH?V=JKGQ77VYCZW  40 minutos a varias horas hasta que las heces se aclaren.  Ascaris y Trichuris permanecen visibles y reconocibles por meses.  Ancylostomas en 30-60 minutos se aclaran y dejan de ser visibles.  Schistosoma pueden ser visibles por meses, pero mejor leerlo en menos de 24 horas.  Recuento multiplicarlo por  20 si la plantilla es de 50 mg  24 si la plantilla es de 41.7 mg
  13. 13. PLANTILLAS DE KATO-KATZ  Plantilla de plástico, acero inoxidable, fórmica o cartón.  1mm de espesor y agujero de 9 mm = 50 mg de heces  1.5 mm de espesor y agujero de 6 mm = 41.7 mg de heces  0.5 mm de espesor y agujero de 6.5 mm = 20 mg de heces  Las plantillas siempre deben ser del mismo tamaño para estandarizar dentro del laboratorio  Así la prevalencia e intensidad de infección puede ser comparable y reproducible a otros investigadores
  14. 14. TÉCNICA DE KATO-KATZ
  15. 15. http://www.scielo.org.co/pdf/iat/v26n1/v26n1a02.pdf
  16. 16. MCMASTER  Método cuantitativo  Veterinarios: caballo, cabras, cerdos, perros, ovejas  En todo el mundo  Fácil de usar  Resistente (plástico)  Lavado fácil Vista de Perfil de la Cámara de McMaster
  17. 17. CÁMARA DE MCMASTER  1g en 20 ml de NaCl hipersaturada (tubo de ensayo = 5g en 100 ml (÷5=20)  Homogenizar y filtrar  Llenar la cámara: 0.5 ml por cámara (1ml si se cuentan dos cámaras) h.p.g. = # de huevos x 100 / 0.5 / 5
  18. 18. INTERPRETACIÓN Y FACTORES INFLUYENTES EN EL CONTEO DE HUEVOS El número de huevos no es necesariamente indicativo del número de gusanos presentes por:  Los huevo son producidos solamente por gusanos hembras, adultas, fértiles (o hermafroditas) y por tanto, podrán estar ausentes en infecciones con parásitos inmaduros a de un solo sexo  La producción diaria de huevos por hembras fértiles está influenciada por factores fisiológicos del hospedero tales como estrés o lactación (incremento) o inmunidad (decremento)  La quimioterapia también puede afectar la producción de huevos e.g. corticosteroides (incremento) o dosis sub-letales de antihelmínticos (decremento)  Algunos alimentos y piensos pueden tener un efecto similar e.g. forrajes ricos en taninos (decremento) en animales  La concentración de huevos (por gramo de heces) está influenciada por el volumen diario de heces producido por el hospedero, la tasa de pasaje de la ingesta a través del intestino, y la distribución de los huevos en la masa fecal  Algunos tipos de huevos son más pesados que otros y podrían no flotar bien en soluciones de baja gravedad específica (e.g. Fasciola)  Algunos huevos de diferentes especies son indistinguibles (particularmente trichostrongílidos y strongílidos). Esto complica la interpretación clínica debido a que algunas especies (e.g.Haemonchus) producen muchos más huevos por día que otras (e.g.Ostertagia).
  19. 19. http://www.rvc.ac.uk/review/parasitology_spanish/ RuminantEggs/Common.htm

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