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Mikael ATTIA 310 avenue Roger Salengro 92370 Chaville
Tél: 06 03 11 44 58
E-mail: attiamikael@yahoo.fr
Nationalité française, né le 22-11-1978
FORMATION
2009 : Doctorat en Biologie, Ecole doctorale Logique du Vivant/ Institut Pasteur, Paris.
2005 : Master 2 Génome, Cellules, Développement, Evolution, Paris Sud XI.
2004 : Licence de Biologie Mention Biologie Cellulaire & Physiologie, Paris VI Pierre et Marie Curie.
1999 : Baccalauréat série Scientifique (S), Paris.
EXPERIENCES PROFESSIONNELLES
Depuis 2011: Ingénieur de recherche: Laboratoire du Pr Heard à l'Institut Curie, Paris.
Axe de recherche: Epigénétiques, Organisation nucléaire et cellules souches.
Projet 1: Caractérisation de l'expression monoallélique aléatoire dans des cellules souches
murines.
Projet 2: Analyse de l'organisation nucléaire du chromosome X inactif dans des cellules
souches murines.
2009 - 2011: Post doctorant : Laboratoire du Pr Avner à l'Institut Pasteur, Paris.
Axe de recherche: Etude d'une chaperone d’histone (NAP1L2) exprimée spécifiquement
dans le système nerveux.
Projet: Mise en évidence d'interactions protéiques entre les membres de la famille NAP.
2005 - 2009: Thèse: Laboratoire du Pr Avner à l'Institut Pasteur, Paris.
Axe de recherche: Mécanismes épigénétiques et différenciation neurale.
Projet: Rôle de Nap1l2 au cours de la différenciation de cellules souches en neurones.
COMPETENCES
Techniques et savoirs scientifiques
• Connaissances approfondies dans le domaine de l'organisation du génome en chromatine,
en épigénétique, en biologie du développement et en épigénétique.
• Techniques de laboratoire pratiquées:
Culture cellulaire: Cellules souches murines (ES) (+/- feeders) en milieu avec ou
sans sérum (2i), différenciation d'ES en cellules souches neurales (NPC) et en
neurones ou astrocytes. Culture de cellules primaires : cellules souches neurales
murines obtenues après dissection de la zone sous ventriculaire. Culture de
lignées stables (HeLa, HEK-293, C2C12). Maîtrise des techniques de

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transfections, de clonage cellulaire (ES et NPC), et d'isolation manuelle de cellule
unique (application pour RT-PCR).
Imagerie cellulaire: Immunofluorescence, hybridation in situ (ARN et ADN),
microscopie (microscope à épifluorescence et confocal). Utilisation de logiciel
d'analyse d'image (imageJ).
Biologie Moléculaire: Préparation d’ADN génomique et de plasmide, préparation
d’ARN, analyse par Bioanalyser, PCR et PCR en temps réel, pyroséquencage
(PCR allèle spécifique). Ingénierie génétique in vitro (CRISPR/CAS):
Conception, clonage, purification, transfection, génotypage. Ingénierie génétique
in vivo (CRISPR/CAS): Transcription in vitro, polyadénylation, purification pour
microinjection.
Biochimie: Purification de protéines, traduction de protéines in vitro, synthèse de
protéines recombinantes, Immunoprecipitation (IP) de protéines, Chromatine IP,
GST-Pull down, Western blotting, Far Western-blot.
Maîtrise des techniques d'élevage d'animaux, de manipulation, de dissection
(organes ou embryons) et de génotypage de souris.
Maîtrise d'outils informatiques bureautiques.
Travail d'équipe
• Pilotage et soutien technique de plusieurs projets de recherche résultant à la publication
d'articles scientifiques.
• Capacité de synthèse et d'interprétation de données: présentations au sein du laboratoire,
de séminaires internes et présentations de posters.
• Formation, conseil et encadrement (notamment en pièce de culture) de collègues de
différents niveaux (BTS, Master 2, Post-doctorant).
• Rédaction de protocoles.
• Travail dans un environnement international et multiculturel.
• Responsabilité :
o Pièce de culture (pendant 8 ans): maintenance, commande de consommable et
formation.
o Pièce radioactive.
o Parc informatique.
Langues
• Français (langue maternelle).
• Anglais compréhension écrite et orale.

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PUBLICATIONS
Giorgetti L*, Lajoie BR*, Carter AC*, Attia M*, Zhan Y, Xu J, Chen CJ, Kaplan N, Chang HY,
Heard E, Dekker J
Structural organization of the inactive X chromosome
In press dans Nature (Article) *
co-auteurs.
Guyochin A, Maenner S, Chu ET, Hentati A, Attia M, AvnerP, Clerc P.
Live cell imaging of the nascent inactive Xchromosome during the early differentiation process of naive
ES cells towards epiblast stem cells.
Plos One. 2014 Dec 29;9(12):e116109 (Article)
Gendrel AV*, Attia M*, Chen CJ*, Diabangouaya P, Servant N, Barillot E, Heard E.
Developmental dynamics and disease potential of random monoallelic gene expression.
Dev Cell. 2014 Feb 24;28(4):366-80 (Article) *
co-auteurs
Attia M, Förster A, Rachez C, Freemont P, Avner P, Rogner UC.
Interaction between nucleosome assembly protein 1-like family members.
J Mol Biol. 2011 Apr 15;407(5):647-60 (Article)
Navarro P, Oldfield A, Legoupi J, Festuccia N, Dubois A, Attia M, Schoorlemmer J, Rougeulle C,
Chambers I, Avner P.
Molecular coupling of Tsix regulation and pluripotency.
Nature. 2010 Nov 18;468(7322):457-60 (Article)
Attia M, Rachez C, De Pauw A, Avner P, Rogner UC.
Nap1l2 promotes histone acetylation activity during neuronal differentiation.
Mol Cell Biol. 2007 Sep;27(17):6093-102 (Article)
REFERENCES
Edith Heard
Professeur au collègue de France; Chair d'Epigénétique et Mémoire Cellulaire.
Directeur de l'unité Génétique et biologie du développement UMR3215/U934,
Chef d'équipe Epigenèse et développement des mammifères,
Institut Curie-Centre de Recherche, 75005 Paris, France
Tel: 33 1 56 24 66 91
Mail : Edith.Heard@curie.fr
Ute Rogner
Responsable de thèse à l'Institut Pasteur dans l'équipe de Philip Avner.
DR2-CNRS, dans l'unité Immunologie du diabète, UMR8104/U1016,
Institut Cochin, 75014 Paris, France
Tel: 33 1 76 53 55 89
Mail : ute.rogner@inserm.fr