Se describen las técnicas básicas que se realizan en un laboratorio clínico sumado a una breve introducción de algunas enfermedades

1. PRINCIPIOS BÁSICOS EN EL
LABORATORIO CLÍNICO
Jorge Negrete Peñata
Bacteriólogo; Magister en Biotecnología
Andrés Torres Usta
Biólogo

2. HEMOCLASIFICACIÓN
• Es un método clínico por medio del cual se conoce el tipo específico de
sangre que tiene el paciente.
• El tipo de sangre depende de si hay o no ciertas proteínas, llamadas
antígenos, en sus glóbulos rojos.
• La sangre a menudo se clasifica de acuerdo con el sistema de tipificación
ABO. Este método separa los tipos de sangre en cuatro tipos:
• Tipo A
• Tipo B
• Tipo AB
• Tipo O

5. Razones por las que se realiza el examen
• Este examen se hace para determinar el tipo de sangre de una persona.
• Los médicos necesitarán conocer su tipo de sangre cuando le vayan a hacer
una transfusión de sangre o un trasplante, debido a que no todos los tipos
de sangre son compatibles entre sí.

8. PUNCIÓN VENOSA Y CAPILAR
• PUNCIÓN VENOSA
La punción venosa permite extraer una mayor cantidad de sangre para las
pruebas necesarias en hematología, química y serología.
Las venas de elección suelen ser las de la cara anterior del antebrazo (vena
cubital, vena cefálica y la vena basílica) porque resulta fácil acceder a ellas.

10. Preparación del paciente
• Instruya al paciente sobre la técnica para tomar la muestra. Valore la
existencia de problemas hemorrágicos o de circulación, o alergias en látex.
• Evite puncionar en un área con hematoma, fístulas, quemaduras,
escoriaciones de la piel, cicatrices o del costado en que se ha realizado
mastectomía reciente.
• Evite puncionar en el brazo donde hay venoclisis, inyección intramuscular
previa o administración de medicamentos vía intravenosa.
• Avisar al paciente que al introducir la aguja sentirá dolor.
• Extienda completamente el brazo con la superficie palmar hacia
arriba. Solicite ayuda del paciente, si éste está consciente, para realizar
palanca con el brazo libre.

11. Precauciones generales
• Durante la toma de muestra deben guardarse las más estrictas
normas de higiene. Practique las precauciones universales mínimas
con todo paciente a ser atendido.
• Toda muestra debe ser considerada potencialmente infecciosa y se
deben tomar las precauciones que garanticen la seguridad del
flebotomista y de los pacientes.
• El material descartable a usar se abrirá sólo al momento de su
utilización y, una vez manipulado, no podrá guardarse nuevamente
aún cuando se le considere nuevo.

12. • Tome precauciones al manipular agujas y/o lancetas.
• No deje agujas y/o lancetas usadas en la mesa de trabajo.
• No coloque el protector a la aguja.
• Evite que los niños toquen o jueguen con los equipos de flebotomía.
• Una vez realizada la toma de muestra, descartar inmediatamente los
materiales usados en recipientes para ese fin.

13. • Los recipientes que contienen algodón y los de desecho deben estar
perfectamente cerrados todo el tiempo y se abrirán solamente al
momento de usar.
• Al momento de hacer la extracción colocarse los guantes
desechables, los cuales se mantendrán puestos durante todo el
procedimiento.
• Si ocurre un pinchazo accidental, informar inmediatamente al jefe de
laboratorio. Mantenga la calma, y lávese inmediatamente con agua,
jabón y alcohol. Favorezca la salida de sangre por presión continua.

15. MUESTRA DIRECTA DE FLUJO VAGINAL
• Explicar al paciente lo que se le va hacer
• Acostar a la paciente en posición ginecológica
• Introducir espéculo sin lubricar
• Tomar muestra con un isopo estéril del fondo de vagina
• El isopo con muestra, emulsionarla en el frasco de suero fisiológico.
• Eliminar la tórula Rotular la muestra con nombre completo, servicio, hora,
tipo de muestra y su orden
• Enviar la muestra inmediatamente al Laboratorio
• Sacarse los guantes y lavarse las manos una vez finalizada la toma de
muestra

16. Recomendaciones al paciente
• No se aplique óvulos ni medicamentos intravaginales ocho días antes de la
toma de la muestra.
• No se haga baño con ducha vaginal el día de la toma de la muestra.
• No tenga relaciones sexuales tres días antes a la toma de la muestra.
• El examen no se debe realizar cuando tenga el período menstrual, en tal
caso, la muestra debe ser tomada ocho días después de terminado éste.

20. Tinción de Gram o coloración de Gram
• Es un tipo de tinción diferencial empleado en Bacteriología para la
visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas.
• Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana
como para poder realizar una primera aproximación a la
diferenciación bacteriana, considerándose
• Bacteria Gram positiva a las bacterias que se visualizan de color
morado
• Bacteria Gram negativa a las que se visualizan de color rosa o rojo.

22. Tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR)
• Es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, usada para
la identificación de microorganismos patógenos, como M.
tuberculosis o el género Apicomplexa (coccidios intestinales) entre
otros.

24. TINCIÓN DE WRIGHT
• Es un tipo de tinción usada en histología para facilitar la
diferenciación de los tipos de células de la sangre.
• Se usa principalmente para teñir frotis de sangre y punciones
medulares, para ser examinadas al microscopio. En citogenética se
usa para teñir cromosomas, para facilitar el diagnóstico
de síndromes y enfermedades.

25. PROCEDIMIENTO
• Realizar un frotis de sangre periférica
• Secar a temperatura ambiente
• En un puente de tinción colocar la lámina con el frotis de sangre
periférica
• Adicionar colorante de wright hasta forma un colchón de colorante
• Adicionar 2 gotas de buffer y dejar actuar por 5 minutos
• Lavar con agua y dejar secar a temperatura ambiente