Este documento describe el manejo de reproductores de rodaballo y el desarrollo embrionario de sus huevos en diferentes temperaturas y salinidades. Se investigaron los efectos de temperaturas entre 8-18°C y salinidades entre 5-40% en el desarrollo de huevos de rodaballo. Se encontró que una temperatura de 14°C y una salinidad de 18% produjeron las mejores tasas de fertilización y eclosión.

1. UNIVERSIDAD NACIONAL DEL CALLAO
FACULTAD DE INGENIERÍA PESQUERA Y ALIMENTOS
ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA PESQUERA
Integrantes (Grupo 6):
Mansisidor Pérez,Anaís.
Mio Mio ,John Antony.
Oncoy More ,Gabriel Alexander.
Quispetupac Callocunto ,Milagros Yanet.
Saavedra Diaz Enzo Jair.
Callao -2023A
Traducción del video “ (Manejo de Reproductores de Rodaballo ,Psetta maxima (Linnaeus,
1758).

2. El Desarrollo Embrionario de los huevos del
Rodaballo del Mar Negro (Psetta maxima
Linnaeus,1758) en Diferentes Temperaturas
de Incubación y Salinidades
• En esta investigación , los efectos de diferentes temperaturas (8,10,12,14,16y 18 °C)
salinidades (5,10,18,20 ,25,30,35 y 40 %) en el desarrollo de los huevos de rodaballo (Psetta
máxima ) se investigaron por triplicado .En esta investigación se utilizaron reproductores en
CFRI .Se midieron la fecundación , la eclosión , la tasa de anomalías y la longitud de las larvas
.Se observo un desarrollo embrionario dependiente del tiempo.
• El desarrollo embrionario se completo en cada temperatura .Se observa que la temperatura del
agua tiene efectos significativos en la fecundación ,eclosión ,y la longitud de larvas (P < 0.05)
.El análisis de regresión mostró que había una correlación negativa entre el desarrollo
embrionario y la temperatura del agua de incubación .El tiempo de eclosión a 8 y 18 °C fue de
2552 horas /grado y 1350 horas / grado, respectivamente .Las mejores tasas de fertilización se
obtuvieron en salinidades de 18 % ,20% y 25% respectivamente .La fertilización no tuvo éxito
en los valores de salinidad de 5% y 10 % .La tasa de anomalía en los valores de salinidad de
15%y 40 % fue mayor que de acuerdo en otros valores de salinidad.
• De acuerdo con el resultado de este estudio ,para obtener una alta tasa de fertilización y
eclosión y una baja normalidad para el rodaballo del Mar Negro , la temperatura dela gua y la
salinidad del agua se encontraron en 14°C y 18 % ,respectivamente.

3. Manejo de Reproductores de Rodaballo (captura de reproductores,
manejo y selección, condiciones ambientales)

4. Turbot
• Psetta máxima (linnaeus,1758)
• Nombre : kalkan (turco), turbot (ingles)
• Limites de temperatura :4-28 º
• Hábitat: en arena y pedregales a 70 -120m de profundidad del mar
• Área de vida : mar negro , Mármara y el egeo.
• Salinidad : especies de eurihalina 6-4 %

5. Localización
Atlántico nororiental: a lo largo del Mediterráneo y a lo largo de las costas europeas hasta el Círculo Polar Ártico; también se
encuentra en la mayor parte del mar Báltico y el mar Negro

6. Alcanza una longitud máxima de 1 m y un peso de unos 25 kilogramos.

7. Características Biológicas
Pez plano. Cuerpo casi circular. Ojos en el lado izquierdo del cuerpo. Boca grande. Aleta dorsal con el origen delante del ojo
superior y los primeros radios no ramificados. La línea lateral describe una pronunciada curva encima de la aleta pectoral. Cara
ocular rugosa, con escamas transformadas en tubérculos óseos. Coloración muy variable en la cara ocular, mimética, con tonos de
fondo parduscos y verdosos cubiertos de multitud de manchas de distinto tamaño claras y oscuras. Hasta 1 m de longitud.

8. Alimento
• Anchoa
• La pescadilla
• Pez astrónomo
• Caballa
• cangrejo

9. Fuente de huevos fertilizados

10. Fuente de huevos fertilizados
Reproductores salvajes reproductores criados en
hatchery

11. Captura y Transporte
Migración para el desove:
Los kalkan migran desde aguas profundas en el mar negro entre marzo y mayo durante la temporada de desove

12. Captura : El kalkan generalmente se captura con redes de enmalle (tamaño de malla de 20 cm, 1000 m de largo y 1,4 m
de alto).

13. los reproductores capturados por el barco de investigación utilizando redes de arrastre están físicamente en buenas
condiciones debido al menor tiempo de captura.

14. Transporte
Entrada de tanque grande
Tubo de oxigeno (𝑜2)
Orificio de entrada de la manguera de aire
válvula de descarga de agua
Tanque de transporte
Se utiliza un FRP (1X1X0.5 M) para transportar reproductores
1
2
3
4
5

15. Selección de reproductores
Criterios utilizados en la selección de reproductores
1) si el pez está sano o no
2) si el pez es morfológicamente normal o no; y
3) si el pez está dañado o no, especialmente a lo largo del
margen del poro genital causado por la operación de la red
de enmalle.

16. Control de enfermedades

17. Selección del pez
Identificación del sexo
Hembra
Macho

18. Determinación de la maduración sexual
Para machos : se aplica una presión suave varias veces,
comenzando desde el área justo antes de las aletas
pélvicas y terminando cerca del poro urogenital
Para hembras : las hembras se pueden comprobar
mediante pelado manual o mediante canulación para
determinar su madurez

19. La canulación
Es una técnica de introducir una cánula para evaluar los ovocitos busca determinar el tamaño de los ovocitos

20. verificación de madurez de muestras gonadal
por examen microscópico
Para machos: la actividad de los espermatozoides se
examina bajo un microscopio con un aumento de 100x
Para hembras : se transfiere una pequeña cantidad de
huevos a un vaso para medir el diámetro del huevo.

21. Tanque de desove
El tanque de maduración está hecho de FRP con
dimensiones de 1m x 2m x 0,5 m
Almacenamiento
Al principio, los reproductores se transfieren a un
tanque de aclimatación (1x1x0,5m) en el que los
peces crecen lentamente de 10 a 14/15 ºC en un día.
Los reproductores se pueden sembrar a 2-4 peces (2-
7 kg/ind) por m2 en un tanque de maduración. Debe
evitarse el exceso de población para evitar el estrés
físico de los reproductores.

22. Manejo de reproductores
Para evitar el deterioro de la calidad del agua causado por la descomposición de los huevos muertos en un tanque de maduración, el
fondo del tanque se limpia con sifón diariamente. Durante el desove, los peces no se alimentan para mantener la calidad del agua.

23. Manejo de reproductores criados en
tanques

24. El propósito principal del desarrollo de reproductores en tanques es formar una producción estable, obtener
gametos de alta calidad y controlar el tiempo de desove.

25. Selección y almacenamiento
• Eliminación de pez anormal
Los reproductores se seleccionan por su apariencia general de salud.

26. Identificación del sexo y almacenamiento.
El sexo de los turbot jóvenes ya se puede identificar en peces de 1 año con un peso corporal promedio de 400 g.

27. Pit Tag
Etiquetas de transpondedor integrado pasivo (PIT)

28. Tanques de concreto y FRP para reproductores

29. Alimentación

30. Control de enfermedades
Vibriosis Forunculosis

31. Identificación de trastornos de salud
Pez saludable vs enfermo : Cambios de color

32. Desove inducido e inseminación
artificial

33. Preparación de la hormona
Para machos: la gonadotropina coriónica humana (HCG) y la glándula pituitaria blanca (WSPG) se mezclan bien y
se homogeneizan en un recipiente de cerámica. La preparación hormonal se aspira con una jeringa y luego se inyecta
a los peces machos lo antes posible.
(HCG) Preparación de la suspensión con WSPG y HCG
usando un homogeneizador

34. Para hembras
A. Hormona (LHRH-a)
B. Aceite de caco
C. Colesterol
D. Etanol (%60)
E. Homogenización
F. Herramienta de hormonas formadas en gránulos
G. Hormona formada en gránulos

35. Administración
Factor clave que determina la eficiencia de los tratamientos con GnRha para inducir el desove.
1. Momento de administración: etapa de maduración de las gónadas. El tratamiento debe aplicarse sobre peces
sexualmente maduros.
2.Tipo de administración : Estimulación aguda (inyección) o sostenida (implantes)

36. Tratamiento hormonal
Para tratamientos hormonales sólo se utilizan machos maduros con semen y hembras maduras con ovocitos de más de
0,4 mm de diámetro.

37. para hembras
Para machos
Inyección de hormona en la musculatura
dorsal derecha de un macho
Implantes que se insertan en la musculatura
dorsal derecha de una mujer.

38. Métodos por inyección o implantación
Para machos: La inyección se hace usando 1 o 5 ml. La hormona se inyecta en los músculos de la parte
dorsal del cuerpo cerca de la aleta dorsal.
Para hembras: se implanta una forma de gránulo de LHRH-a en el músculo cerca de la aleta dorsal
usando un tubo de metal.
Cantidad de hormona
Para machos: la dosis es de 500 UI de HCG y 7 mg de WSPG/KG de peso de pescado. Se realiza un solo
tratamiento.
Para hembras: La dosis es de 100 µg de LHRH peletizado-a/kg de peso del pez. Se realiza un solo
tratamiento.

39. Inseminación artificial

40. Huevos despojados de una hembra kalkan

41. Huevos recién despojados

42. Método seco
Método húmedo

43. Incubación
A)Preparación de tanques y equipamiento.
B)Tratamiento con yodo (desinfección de huevos)
C)Incubación de huevos (Desarrollo de huevos, estimación de la tasa de fertilización, manejo, estimación de la
tasa de eclosión).

45. Desinfección del huevos

46. Tanque de incubación (100 L)

47. A-Huevos fertilizados, B-Blastómero de 2 células. C -
Blastómero de 4 células, D-Blastómero de 8 células , E -
Blastómero de 16 células ,F-Blastómero de 32 células ,G-
Fase de mórula ,I-fase de blástula .J-Ecto -gástrula ,K-Meso
-gástrula, L-Formación embrionaria , M-Neurula ,N -Endo -
neurula ,O-fase embrionaria -I,P Fase embrionaria -II,R -
Fase embrionaria -III,S.Fase larvaria ,T–Eclosionado (50%)
.U-Eclosión (100%).

48. Estimación de la tasa de fertilización
• Para la tasa de fertilización, debe ser usada esta ecuación:
Un huevo fertilizado en la etapa de 4
células

49. Manejo del tanque de incubación
Por lo general, los huevos hundidos de color blanquecino se consideran muertos, aunque se mezclan pocos huevos viables.
Los huevos viables flotan en la superficie del agua o en la columna de agua. Para eliminar los huevos muertos, la aireación
y el suministro de agua se detienen unos minutos. se desvían para minimizar el crecimiento de bacterias y protozoos.

50. Estimación de la tasa de eclosión
• Para la tasas de fertilización, debe ser usada esta ecuación:

51. Tanque de larvas

52. ¡MUCHAS GRACIAS!