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LIQUIDOS DE PUNCION

Bioq. Julia Irene Ariagno
Hospital de Clinicas “José de San Martín”
Facultad de Farmacia y Bioquímica
Universidad de Buenos Aires
LIQUIDOS DE PUNCION
 LCR
 Líquidos de derrame en cavidades

serosas
 Líquido pleurar
 Líquido ascítico
 Líquido pericárdico
LCR
ANATOMÍA Y FISIOLOGÍA
 Formación: En los plexos coroideos, a través de
procesos de ultrafiltración y secreción activa.
 Volumen:
o Adultos: 90 – 150 mL
o Neonatos: 10 – 60 ml
 Funciones:
o Colchón protector para el tejido nervioso central
o Recogida de productos de desecho
o Circulación de nutrientes
 Barrera hemato-encefálica:
o Epitelio de plexos coroideos
o Endotelio de los capilares en contacto con el LCR
INTERÉS CLÍNICO DEL LCR
• Infecciones del SNC
•Problemas neurológicos no neoplásicos como
hemorragia subaracnoidea o infarto.

•Procesos degenerativos.
• Enfermedades desmielinizantes.

• Tumores del Sistema Nervioso Central o metastásicos.
• Identificar la naturaleza del líquido en fístulas
nasales u óticas.
OBTENCIÓN DE LA MUESTRA
La Presión normal del LCR es:
 Adultos: 90 a 180 mm Hg
 Niños: 10 -100 mm Hg

• Con presiones normales, pueden extraerse hasta 20 mL
de LCR sin ningún peligro.
• Si la presión inicial es >200 mm Hg, no deben
extraerse más de 2 mL.
• Alícuotas
Tubo 1: estudios bioquímicos e inmunológicos
Tubo 2: exámen microbiológico
Tubo 3: recuento de leucocitos y recuento diferencial de
células.
EXAMEN MACROSCÓPICO DEL LCR
 El LCR es translúcido y sin color.
 En presencia de alteraciones, el líquido puede

presentar turbidez:
•

•
•
•

Presencia de gérmenes
Pleocitosis: más de 200 leucocitos / μL
Existencia de hematíes: más de 400 / μL
Nivel elevado de proteínas
EXAMEN MACROSCÓPICO DEL LCR
 Coágulos por fibrinógeno: Punción traumática o
meningitis purulenta. No aparecen en hemorragia
subaracnoidea.
 Viscosidad aumentada: Meningitis criptococcica o
metástasis meníngea.
 Existencia de glóbulos de grasa de diversos tamaños en
el LCR: embolismo graso en el cerebro.
 Color :
Rojizo: hematíes
Verdoso: liberación de mieloperoxidasa
Amarillo: liberación de bilirrubina
DIFERENCIAS ENTRE HSA Y PUNCIÓN TRAUMÁTICA

Determinación

Punción
traumática

HSA

Desigual

Igual

Frecuentes

No se observan

Sobrenadante

Incoloro

Xantocrómico

Espectrofotometría
Entre 370 y 530 nm

Negativo

Pico a 415(oxiHb).
Pico a 450-460 nm
(Bb)

Aspecto de los
tubos 1, 2 y 3

Coágulos
EXAMEN MICROSCÓPICO DEL LCR
Células: Escasas, de tipo monocítico.
Lisis del 40% en 2 horas a temperatura ambiente.

• Neonatos: Hasta 20-30 células.
• Niños y adultos: Hasta 5-10 células.
EXAMEN QUÍMICO
 Proteínas
Normalmente el LCR contiene 0,15 a 0,30 g/oo de proteínas
constituidas fundamentalmente por albúmina.

 Glucosa
Se determina como en suero. Normalmente la glucosa en
LCR es aproximadamente el 60 a 80% del valor en sangre.
Procede de la glucosa sanguínea por mecanismos de
transporte activo y difusión por gradiente de concentración.
 Glucorraquia: 60 % de la concentración plasmática.
 Hiperglucorraquia: Por hiperglucemia.
 Hipoglucorraquia: Por meningitis bacteriana cociente < 0.4

Niveles por debajo de 40 mg% se consideran disminuidos,
pudiendo llegar a ser no dosables en las meningitis bacterianas.
EXAMEN QUÍMICO
 Lactato

* Se determina como en suero.
Valor de referencia: 9-26 mg% (1-2.7 mmol/L)
* Es independiente de la concentración plasmática.
* Refleja el metabolismo cerebral anaerobio por
hipoxia.
* Aumenta: Infarto cerebral,edema, trauma o
meningitis.

 LDH
Se determina como en suero.
Valor de referencia 0-25 UI/l
VALORES DE REFERENCIA
PARAMETRO
Glucosa

Proteínas totales
Albúmina

VALOR DE REFERENCIA
60-80 mg%

Adultos: 0.15-0.60 g/l
Neonatos: 0.50-1.00 g/l
10-30 mg%

Cloruro

115-130 mEq/l

Lactato

9-26 mg% (1-2.7 mmol/L)

LDH
Leucocitos
Rto. diferencial (adultos)

Rto. diferencial (neonatos)

0-25 UI/l
Adultos: 0-5/10 cel/mm3
Neonatos 0-30 cel/mm3
L: 60% ±20%
M: 30% ±15%
N: 2% ±4%
L: 20% ±15%
M: 70% ±20%
N: 4% ±4%
LCR examen directo

leucocito

hematie
LCR examen directo
LCR examen directo

Leucocitos hinchados por el Turck

Leucocitos con líquido de Turk
LCR examen directo

Leucocitos con líquido de Turk
Ligera pleocitosis, predominio de neutrófilos
Pleocitosis con predominio de neutrófilos
PLEOCITOSIS: Aumento del contenido de células (superior a lo
normal), puede ser leve, moderada o intensa
Meningococo
Piocito en LCR
Cuadro citológico mixto con presencia de macrófagos
Predominio de células linfoides
Predominio de células linfoides
Células ependimarias

 Su presencia es ocasional, se presentan aisladas o en grupos, son más
frecuentes en niños y en muestras obtenidas de los ventrículos. Su hallazgo carece
de significación patológica
Células de los plexos coroideos

 Morfológicamente muy próximas a las células ependimarias.
Células ependimarias y de los
plexos coroideos
LÍQUIDOS DE DERRAME EN
CAVIDADES SEROSAS
Tanto el líquido pleural como el pericárdico y el peritoneal
(ascítico) son un ultrafiltrado del plasma, cuya formación depende
del equilibrio entre la presión hidrostática capilar, la presión oncótica
plasmática, la permeabilidad capilar y la resorción linfática.
Normalmente la cantidad de líquido que se encuentra es de
alrededor de 15 ml en la cavidad peritoneal y 1ml en la cavidad
pleural, y su función es la facilitar el movimiento de las dos capas de
epitelio que constituyen la cavidad pleural, pericárdica y la abdominal.
Las acumulaciones de líquido en estos espacios se denominan
derrames que serán transudado o exudado de acuerdo al origen.
Los TRANSUDADOS (o trasudados) son acumulaciones de
líquido debidas a un aumento de la presión hidrostática de los
capilares o a una disminución de la presión oncótica plasmática, su
origen pues es mecánico.
Las causas que provocan la aparición de transudados
incluyen la insuficiencia cardíaca congestiva, la cirrosis
hepática y el síndrome nefrótico.

Los EXUDADOS se originan por un aumento de la permeabilidad
capilar o una disminución de la reabsorción linfática.
Las causas que más frecuentemente provocan la aparición de
exudados son las infecciones, las neoplasias y los procesos
inflamatorios no sépticos como la enfermedad reumática.
Líquidos de derrame
Pruebas de laboratorio

Propósito:
Diferenciar transudados (Tr) de exudados (Ex)
Diferenciar procesos malignos de no
malignos
Causas especificas
Evaluación de la muestra
(Extracción con jeringa heparinizada)
1. Observación de tubos enviados, elección del más adecuado
2. Homogenización. Observación de color y aspecto
3. Observación microscópica en fresco ( 10x – 40x )
4. Recuento de células nucleadas
Hematocrito
5. Centrifugación (concentración). Extendido. Coloración
6. Observación de sobrenadante y sedimento
7. Recuento diferencial: Porcentaje de: Neutrofilos, Eosinófilos, Linfocitos,
Macrófagos, Células mesoteliales, Otras.
Comentarios Aclaratorios
8. Sobrenandante: Exámen químico
Problemas habituales con las muestras

Dificultad con el recuento celular (precipitación al agregar
acético 3%, recuento automatizado no repetible y discordante con
observación en fresco, etc.)
Presencia de pequeños coágulos
Presencia de acúmulos celulares (observación en fresco)
Muestra francamente purulenta

Muestra coagulada
Líquido quiloso: interferencia en el exámen químico
Examen Citológico

Recuento de
leucocitos

< 1.000/mm3

Transudado (Tr)

> 1.000/mm3

Exudados (Ex)

(Valor limitado en la diferenciación)

5.000 a 10.000/mm3

Recuento de
hematíes

> 100.000/mm3

Tr - Ex
Sugestivo de proceso
neoplásico, trauma o
embolia pulmonar

(Hto (L) <1%: no significativo
1-20%: cáncer, embolia pulmonar, o trauma

>50% del hematocrito periférico = Hemotórax)
Células nucleadas

c Neutrófilos, eosinófilos, basófilos.
c Linfocitos, plasmocitos
c Macrófagos mononucleares
c Células mesoteliales
c Células malignas
DERRAME PLEURAL
DERRAME PLEURAL

Cavidad pleural: formada por la membrana mesotelial externa
(pleura parietal) y la membrana mesotelial interna (pleura
visceral)
Toracocentesis: procedimiento mediante el cual se obtiene
una muestra de líquido pleural
Determinaciones en el líquido
pleural


Muestras: recolección con heparina para fisicoquímico y citológico.



Extracción sangre venosa (máximo 2hs de diferencia)

Examen Físico-Químico:
Observación macroscópica: color y aspecto
Observación en fresco
Observación post centrifugado (sobrenadante y sedimento)
Examen químico: ( en L.P. y suero )
Glucosa
Proteinas totales
LDH
pH

Determinación opcionales (según sospecha clínica)
Amilasa, lipasa, triglicéridos, colesterol, urea y
creatinina, bilirrubina, FAL, ADA, Marcadores tumorales, etc.
CRITERIOS DE SEPARACIÓN ENTRE EXUDADOS Y
TRASUDADOS
EXUDADO:
 Proteínas totales en LP > 3,0 g/dl
 Criterios de Light (uno o más de los siguientes 3):

1- Relación proteínas del líquido pleural y proteínas séricas >0,5
2- Relación LDH del líquido pleural y LDH sérica >0,6
3- LDH del líquido pleural > 2/3 por encima del límite normal del
nivel sérico de LDH
• Light RW, MacGregor MT, Luchsinger PC, Ball WC. Pleural effusions: the diagnostic separation of
transudates and exudates. Ann Intern Med 1972; 77:507-13.
DETERMINACIONES COMPLEMENTARIAS
Empiema
Ruptura esofágica (<6,0), TBC, neoplasia, enfermedades
del tej. Conectivo.

 pH < 7,2

 Gradiente de albúmina
≥ 1.1 g/dl

Albumina del suero – Albumina del L.P.
Líquidos transudativos no malignos

< 1.1 g/dl

Líquidos exudativos malignos o infecciosos

o ADA (Adenosindeaminasa)
ADA > 45 U/L

Pleuritis tuberculosa
(También se eleva en: empiema, lupus eritematoso,
artritis reumatoide, pseudoquiste pancreático)
Líquido Pleural
valor del recuento diferencial de leucocitos
Predominio de Neutrófilos
- Neumonía bacteriana
- Embolismo-Infarto pulmonar
- Pancreatitis
Predominio de linfocitos

- Derrames tuberculosos
- Derrames neoplásicos
- Quilotorax
- Linfocitosis benigna inflamatoria
- Insuficiencia cardiaca y cirrosis
- Infecciones virales
Derrames Eosinofílicos: más de 10% de eosinófilos
Causas de derrame pleural
eosinofílico
- Idiopatico
- Aire en espacio pleural
Neumotórax (espontáneo)
Postoperatorio
Trauma
- Infección
Paraneumonica
Tuberculosis
Empiema
- Enfermedades malignas
- Infarto pulmonar
- Enfermedades reumatológicas
- Otros
Líquido pleural
Principales causas malignas
Adenocarcinoma de pulmón
 Carcinoma de pulmón
 Cáncer de mama
 Linfoma no – Hodgkin
Mesotelioma (Primario)
Liquido pleural

aspecto lechoso ?

El Derrame Quiloso se origina de la
salida del linfa a través del conducto
torácico, que generalmente es
Secundario a una obstrucción o
traumatismo de este conducto.
En esta situación se dice
que el paciente presenta Quilotorax.
Los Derrames Seudoquilosos son
causados por el metabolismo o
descomposición de lípidos celulares
presentes en un derrame de evolución
larga. Así puede acumularse una efusión
pleural quiliforme. En este caso el
paciente presenta Pseudoquilotorax.
Diagnostico diferencial
Se debe diferenciar entre un empiema y un PSQT.
Aspecto lechoso en el empiema
GB
Si centrifugamos
sobrenadante claro
empiema
sobrenadante turbio
QT o PSQT
Si observamos sedimento
cristales de colesterol
PSQT

Medida de TG

mayor a 110 mg/dl

QT

debajo de 50 mg /dl

descarto QT

Valores entre 50 y 110
analisis de lipoproteinas para
demostrar la presencia de Qm
QT
Características distintivas de derrames quilosos y pseudoquilosos

Derrames
(pleural o ascitico)

Quiloso
(quilotórax)

Pseudoquiloso

Etiología

Daño u obstrucción del
Conducto Torácico

Derrame crónico

Causas comunes

Trauma, neoplasia,
congénito

Tuberculosis, pleuritis
reumatoide

Comienzo

Brusco

Gradual

Apariencia

Blanco–lechoso o
amarillo-sanguinolento

Lechoso o verdoso

Examen
microscópico

Linfocitosis

Reacción celular mixta.
(a veces, cristales de
colesterol)

Colesterol

< 250 mg/dl

> 250 mg/dl

Triglicéridos

> 110 mg/dl

< 50 mg/dl (algunos
tienen > 110 mg/dl )

Lipidograma

Presencia de
quilomicrones

Ausencia de
quilomicrones
DERRAME ASCITICO
LÍQUIDO ASCITICO

Los órganos del sistema digestivo que están en la cavidad
abdominal son: el hígado, la vesícula biliar, el estómago y los
intestinos delgado y grueso.
Causas de derrame peritoneal
Transudados
Por aumento de presión hidrostática o disminución de la presión
oncótica








Cirrosis hepática
Insuficiencia cardíaca congestiva
Hipoproteinemia (S. Nefrótico)
Metástasis hepática (difusa)
Oclusión de vena porta
Causas de derrame peritoneal
Debido a aumento de la permeabilidad
capilar o disminución de reabsorción
linfatica

Exudados
Infecciones

c

Neoplasia

c

Tuberculosis
Peritonitis bacteriana primaria
Peritonitis bacteriana secundaria
Carcinoma metastásico
Hepatoma
Linfoma
Mesotelioma

Trauma
Pancreatitis
Peritonitis biliar
Derrame quiloso (Trauma, Linfoma, Tuberculosis, Carcinoma)
Líquido Ascitico

Indicaciones de Paracentesis

 Complicaciones de la cirrosis (PBE)
 Sospecha de enfermedad maligna intraabdominal

 Ascitis de origen desconocido
Determinaciones en el liquido
ascítico

Muestras: recolección con heparina para fisicoquímico y citológico.
Bacteriológico:1 tubo estéril con heparina y un frasco de hemocultivo.
Extracción sangre venosa (máximo 2hs de diferencia)

Exámenes de laboratorio
• Observación macroscópica: color y aspecto

• Recuento celular y diferencial
• Examen químico: (en L.A. y suero)
Proteinas totales
Albúmina
• Hepatology. 2003 - Jul;38(1): 258-66. Moore KP, et al.
The management of ascites in cirrhosis: report on the consensus conference of the internainal Ascites Club.
Determinaciones opcionales
 Glucosa (neoplasias, infecciones, perforacion intestinal)
 LDH (neoplasias, infecciones, perforacion intestinal)
 Amilasa (ascitis pancreatica o perforacion intestinal)

 Trigliceridos (ascitis quilosa)
 Bilirubina (perforación intestinal o de vesícula)
 Citología y CEA (neoplasias)
 Coloración de GRAM
 Tuberculosis (ADA, coloracion ZN, cultivo)
Determinaciones no-útiles
 pH
 Lactato
 Colesterol
Procesamiento de la muestra
(Extracción con jeringa heparinizada)
1. Observación de tubos enviados, elección del más adecuado

2. Homogenización. Observación de color y aspecto
3. Observación microscópica en fresco ( 10x – 40x )
4. Recuento celular:

Células nucleadas
(Hematíes - hematocrito)

5. Centrifugación. Extendidos. Coloración
6. Observación de sobrenadante y sedimento
7. Recuento diferencial:
Porcentaje de:
Neutrofilos, Eosinófilos, Linfocitos, Macrófagos, Células
mesoteliales, Otras células.
Comentarios Aclaratorios

8. Sobrenandante: Exámenes químicos
Gradiente de Albumina
GASA = Albumina del suero – Albumina del L. A.

≥ 1.1 g/dl

Hipertensión portal

< 1.1 g/dl

Sin hipertensión portal

GASA Alto: Líquidos transudativos no malignos
GASA Bajo: Líquidos exudativos malignos o
infecciosos
Hoefs JC.. Serum protein concentration and portal pressure determine
the ascitic fluid protein concentration in patients with chronic liver disease. J Lab
Clin Med. 1983 , Aug;102(2):260-73.
Exámen citológico
Cámara de Neubauer
En el recuento en Cámara de Neubauer se emplea el
reticulado central. Para el cálculo, se tiene en cuenta
la dilución efectuada, número de cuadrados contados y la
altura de la cámara



Cels./ml=



Donde:
N = número de células contadas
D = inversa de la dilución empleada
10 = para llevar a mm3






N x D x 25 x 10
n° de cuad. contados
Peritonitis Bacteriana Espontánea
(PBE)

Es la infección del Liquido ascítico preexistente, en
ausencia de un foco séptico de origen Intraabdominal
Complicación frecuente ( 10-30%) de pacientes
cirróticos con ascitis. Síntomas: Dolor abdominal,
fiebre, alteraciones de la motilidad intestinal,
leucocitosis. A veces encefalopatía hepática y fallo
renal.
Peritonitis Bacteriana Espontánea (PBE)

Recuento de neutrofilos >250/mm³
Diagnostico

Cultivo positivo
(generalmente único germen)

Tratamiento: Antibiótico, diuréticos. Control de electrolitos séricos, urea y
creatinina. Control a las 48hs.
Ascitis Neutrocitica

Neutrofilos >250/mm

Cultivo negativo

Descartar otras causas de aumento

 Se trata de manera similar a PBE

Neutrofilos <250/mm

Bacteriascitis
Cultivo positivo (Monomicrobiano)
Si hay sintomas, se trata como PBE
Peritonitis Bacteriana Secundaria
 Causa: Tratable quirúrgicamente
(vísceras perforadas, abscesos, etc.)

 Cultivo positivo (generalmente poli microbiano)
 Neutrófilos >> 250/mm³
 Proteínas y LDH elevadas y glucosa baja, ayudan al
diagnostico diferencial
Grupo de celulas, pueden ser
mesoteliales o neoplasicas, se
vera con la coloracion.
Grupo de celulas en 10x
Grupo de celulas
mesoteliales reactivas
LEUCOCITOS

GIEMSA
MACROFAGOS - ANILLO DE SELLO
LEUCOCITOS POLIMORFONUCLEARES
(NEUTROFILOS)

GIEMSA
DERRAME PLEURAL

LINFOCITOSIS

GIEMSA
DERRAME PLEURAL

Células de Langhans

GIEMSA
L. Pleural. Célula mesotelial y macrófago. Eritrofagocitosis
MACROFAGO (ANILLO DE SELLO)
Macrófagos
Macrofagos, linfocitos
Célula mesotelial trinucleada

GIEMSA (100X)
CÉLULA MESOTELIAL EN MITOSIS

GIEMSA (100x)
LIQUIDO ASCITICO - MITOSIS ANORMAL

GIEMSA (40x)
LIQUIDO ASCITICO - MITOSIS ANORMAL

GIEMSA (100x)
L. pleural. linfocitos
LIQUIDO PLEURAL - ESINOFILIA

GIEMSA (40X)
Liquido pleural - esinofilia

GIEMSA (100X)
CELULAS NEOPLASICAS
GIEMSA

PAPANICOLAOU
CELULAS NEOPLASICAS

GIEMSA
CELULAS NEOPLASICAS EN LIQUIDO ASCITICO

GIEMSA
CELULAS NEOPLASICAS EN LIQUIDO PLEURAL

GIEMSA
CELULAS NEOPLASICAS Y REACCIÓN INFLAMATORIA EN LIQUIDO PLEURAL

GIEMSA
CELULAS NEOPLASICAS
DERRAME PLEURAL POR ARTRITIS REUMATOIDEA
MUCHAS GRACIAS

jiariagno@yahoo.com.ar

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Liquidos de puncion 2013

  • 1. LIQUIDOS DE PUNCION Bioq. Julia Irene Ariagno Hospital de Clinicas “José de San Martín” Facultad de Farmacia y Bioquímica Universidad de Buenos Aires
  • 2. LIQUIDOS DE PUNCION  LCR  Líquidos de derrame en cavidades serosas  Líquido pleurar  Líquido ascítico  Líquido pericárdico
  • 3. LCR ANATOMÍA Y FISIOLOGÍA  Formación: En los plexos coroideos, a través de procesos de ultrafiltración y secreción activa.  Volumen: o Adultos: 90 – 150 mL o Neonatos: 10 – 60 ml  Funciones: o Colchón protector para el tejido nervioso central o Recogida de productos de desecho o Circulación de nutrientes  Barrera hemato-encefálica: o Epitelio de plexos coroideos o Endotelio de los capilares en contacto con el LCR
  • 4. INTERÉS CLÍNICO DEL LCR • Infecciones del SNC •Problemas neurológicos no neoplásicos como hemorragia subaracnoidea o infarto. •Procesos degenerativos. • Enfermedades desmielinizantes. • Tumores del Sistema Nervioso Central o metastásicos. • Identificar la naturaleza del líquido en fístulas nasales u óticas.
  • 5. OBTENCIÓN DE LA MUESTRA La Presión normal del LCR es:  Adultos: 90 a 180 mm Hg  Niños: 10 -100 mm Hg • Con presiones normales, pueden extraerse hasta 20 mL de LCR sin ningún peligro. • Si la presión inicial es >200 mm Hg, no deben extraerse más de 2 mL. • Alícuotas Tubo 1: estudios bioquímicos e inmunológicos Tubo 2: exámen microbiológico Tubo 3: recuento de leucocitos y recuento diferencial de células.
  • 6. EXAMEN MACROSCÓPICO DEL LCR  El LCR es translúcido y sin color.  En presencia de alteraciones, el líquido puede presentar turbidez: • • • • Presencia de gérmenes Pleocitosis: más de 200 leucocitos / μL Existencia de hematíes: más de 400 / μL Nivel elevado de proteínas
  • 7. EXAMEN MACROSCÓPICO DEL LCR  Coágulos por fibrinógeno: Punción traumática o meningitis purulenta. No aparecen en hemorragia subaracnoidea.  Viscosidad aumentada: Meningitis criptococcica o metástasis meníngea.  Existencia de glóbulos de grasa de diversos tamaños en el LCR: embolismo graso en el cerebro.  Color : Rojizo: hematíes Verdoso: liberación de mieloperoxidasa Amarillo: liberación de bilirrubina
  • 8. DIFERENCIAS ENTRE HSA Y PUNCIÓN TRAUMÁTICA Determinación Punción traumática HSA Desigual Igual Frecuentes No se observan Sobrenadante Incoloro Xantocrómico Espectrofotometría Entre 370 y 530 nm Negativo Pico a 415(oxiHb). Pico a 450-460 nm (Bb) Aspecto de los tubos 1, 2 y 3 Coágulos
  • 9. EXAMEN MICROSCÓPICO DEL LCR Células: Escasas, de tipo monocítico. Lisis del 40% en 2 horas a temperatura ambiente. • Neonatos: Hasta 20-30 células. • Niños y adultos: Hasta 5-10 células.
  • 10. EXAMEN QUÍMICO  Proteínas Normalmente el LCR contiene 0,15 a 0,30 g/oo de proteínas constituidas fundamentalmente por albúmina.  Glucosa Se determina como en suero. Normalmente la glucosa en LCR es aproximadamente el 60 a 80% del valor en sangre. Procede de la glucosa sanguínea por mecanismos de transporte activo y difusión por gradiente de concentración.  Glucorraquia: 60 % de la concentración plasmática.  Hiperglucorraquia: Por hiperglucemia.  Hipoglucorraquia: Por meningitis bacteriana cociente < 0.4 Niveles por debajo de 40 mg% se consideran disminuidos, pudiendo llegar a ser no dosables en las meningitis bacterianas.
  • 11. EXAMEN QUÍMICO  Lactato * Se determina como en suero. Valor de referencia: 9-26 mg% (1-2.7 mmol/L) * Es independiente de la concentración plasmática. * Refleja el metabolismo cerebral anaerobio por hipoxia. * Aumenta: Infarto cerebral,edema, trauma o meningitis.  LDH Se determina como en suero. Valor de referencia 0-25 UI/l
  • 12. VALORES DE REFERENCIA PARAMETRO Glucosa Proteínas totales Albúmina VALOR DE REFERENCIA 60-80 mg% Adultos: 0.15-0.60 g/l Neonatos: 0.50-1.00 g/l 10-30 mg% Cloruro 115-130 mEq/l Lactato 9-26 mg% (1-2.7 mmol/L) LDH Leucocitos Rto. diferencial (adultos) Rto. diferencial (neonatos) 0-25 UI/l Adultos: 0-5/10 cel/mm3 Neonatos 0-30 cel/mm3 L: 60% ±20% M: 30% ±15% N: 2% ±4% L: 20% ±15% M: 70% ±20% N: 4% ±4%
  • 15. LCR examen directo Leucocitos hinchados por el Turck Leucocitos con líquido de Turk
  • 16. LCR examen directo Leucocitos con líquido de Turk
  • 18. Pleocitosis con predominio de neutrófilos PLEOCITOSIS: Aumento del contenido de células (superior a lo normal), puede ser leve, moderada o intensa
  • 21. Cuadro citológico mixto con presencia de macrófagos
  • 24. Células ependimarias  Su presencia es ocasional, se presentan aisladas o en grupos, son más frecuentes en niños y en muestras obtenidas de los ventrículos. Su hallazgo carece de significación patológica
  • 25. Células de los plexos coroideos  Morfológicamente muy próximas a las células ependimarias.
  • 26. Células ependimarias y de los plexos coroideos
  • 27. LÍQUIDOS DE DERRAME EN CAVIDADES SEROSAS Tanto el líquido pleural como el pericárdico y el peritoneal (ascítico) son un ultrafiltrado del plasma, cuya formación depende del equilibrio entre la presión hidrostática capilar, la presión oncótica plasmática, la permeabilidad capilar y la resorción linfática. Normalmente la cantidad de líquido que se encuentra es de alrededor de 15 ml en la cavidad peritoneal y 1ml en la cavidad pleural, y su función es la facilitar el movimiento de las dos capas de epitelio que constituyen la cavidad pleural, pericárdica y la abdominal. Las acumulaciones de líquido en estos espacios se denominan derrames que serán transudado o exudado de acuerdo al origen.
  • 28. Los TRANSUDADOS (o trasudados) son acumulaciones de líquido debidas a un aumento de la presión hidrostática de los capilares o a una disminución de la presión oncótica plasmática, su origen pues es mecánico. Las causas que provocan la aparición de transudados incluyen la insuficiencia cardíaca congestiva, la cirrosis hepática y el síndrome nefrótico. Los EXUDADOS se originan por un aumento de la permeabilidad capilar o una disminución de la reabsorción linfática. Las causas que más frecuentemente provocan la aparición de exudados son las infecciones, las neoplasias y los procesos inflamatorios no sépticos como la enfermedad reumática.
  • 29. Líquidos de derrame Pruebas de laboratorio Propósito: Diferenciar transudados (Tr) de exudados (Ex) Diferenciar procesos malignos de no malignos Causas especificas
  • 30. Evaluación de la muestra (Extracción con jeringa heparinizada) 1. Observación de tubos enviados, elección del más adecuado 2. Homogenización. Observación de color y aspecto 3. Observación microscópica en fresco ( 10x – 40x ) 4. Recuento de células nucleadas Hematocrito 5. Centrifugación (concentración). Extendido. Coloración 6. Observación de sobrenadante y sedimento 7. Recuento diferencial: Porcentaje de: Neutrofilos, Eosinófilos, Linfocitos, Macrófagos, Células mesoteliales, Otras. Comentarios Aclaratorios 8. Sobrenandante: Exámen químico
  • 31. Problemas habituales con las muestras Dificultad con el recuento celular (precipitación al agregar acético 3%, recuento automatizado no repetible y discordante con observación en fresco, etc.) Presencia de pequeños coágulos Presencia de acúmulos celulares (observación en fresco) Muestra francamente purulenta Muestra coagulada Líquido quiloso: interferencia en el exámen químico
  • 32. Examen Citológico Recuento de leucocitos < 1.000/mm3 Transudado (Tr) > 1.000/mm3 Exudados (Ex) (Valor limitado en la diferenciación) 5.000 a 10.000/mm3 Recuento de hematíes > 100.000/mm3 Tr - Ex Sugestivo de proceso neoplásico, trauma o embolia pulmonar (Hto (L) <1%: no significativo 1-20%: cáncer, embolia pulmonar, o trauma >50% del hematocrito periférico = Hemotórax)
  • 33. Células nucleadas c Neutrófilos, eosinófilos, basófilos. c Linfocitos, plasmocitos c Macrófagos mononucleares c Células mesoteliales c Células malignas
  • 35. DERRAME PLEURAL Cavidad pleural: formada por la membrana mesotelial externa (pleura parietal) y la membrana mesotelial interna (pleura visceral) Toracocentesis: procedimiento mediante el cual se obtiene una muestra de líquido pleural
  • 36. Determinaciones en el líquido pleural  Muestras: recolección con heparina para fisicoquímico y citológico.  Extracción sangre venosa (máximo 2hs de diferencia) Examen Físico-Químico: Observación macroscópica: color y aspecto Observación en fresco Observación post centrifugado (sobrenadante y sedimento) Examen químico: ( en L.P. y suero ) Glucosa Proteinas totales LDH pH Determinación opcionales (según sospecha clínica) Amilasa, lipasa, triglicéridos, colesterol, urea y creatinina, bilirrubina, FAL, ADA, Marcadores tumorales, etc.
  • 37. CRITERIOS DE SEPARACIÓN ENTRE EXUDADOS Y TRASUDADOS EXUDADO:  Proteínas totales en LP > 3,0 g/dl  Criterios de Light (uno o más de los siguientes 3): 1- Relación proteínas del líquido pleural y proteínas séricas >0,5 2- Relación LDH del líquido pleural y LDH sérica >0,6 3- LDH del líquido pleural > 2/3 por encima del límite normal del nivel sérico de LDH • Light RW, MacGregor MT, Luchsinger PC, Ball WC. Pleural effusions: the diagnostic separation of transudates and exudates. Ann Intern Med 1972; 77:507-13.
  • 38. DETERMINACIONES COMPLEMENTARIAS Empiema Ruptura esofágica (<6,0), TBC, neoplasia, enfermedades del tej. Conectivo.  pH < 7,2  Gradiente de albúmina ≥ 1.1 g/dl Albumina del suero – Albumina del L.P. Líquidos transudativos no malignos < 1.1 g/dl Líquidos exudativos malignos o infecciosos o ADA (Adenosindeaminasa) ADA > 45 U/L Pleuritis tuberculosa (También se eleva en: empiema, lupus eritematoso, artritis reumatoide, pseudoquiste pancreático)
  • 39. Líquido Pleural valor del recuento diferencial de leucocitos Predominio de Neutrófilos - Neumonía bacteriana - Embolismo-Infarto pulmonar - Pancreatitis Predominio de linfocitos - Derrames tuberculosos - Derrames neoplásicos - Quilotorax - Linfocitosis benigna inflamatoria - Insuficiencia cardiaca y cirrosis - Infecciones virales Derrames Eosinofílicos: más de 10% de eosinófilos
  • 40. Causas de derrame pleural eosinofílico - Idiopatico - Aire en espacio pleural Neumotórax (espontáneo) Postoperatorio Trauma - Infección Paraneumonica Tuberculosis Empiema - Enfermedades malignas - Infarto pulmonar - Enfermedades reumatológicas - Otros
  • 41. Líquido pleural Principales causas malignas Adenocarcinoma de pulmón  Carcinoma de pulmón  Cáncer de mama  Linfoma no – Hodgkin Mesotelioma (Primario)
  • 42. Liquido pleural aspecto lechoso ? El Derrame Quiloso se origina de la salida del linfa a través del conducto torácico, que generalmente es Secundario a una obstrucción o traumatismo de este conducto. En esta situación se dice que el paciente presenta Quilotorax. Los Derrames Seudoquilosos son causados por el metabolismo o descomposición de lípidos celulares presentes en un derrame de evolución larga. Así puede acumularse una efusión pleural quiliforme. En este caso el paciente presenta Pseudoquilotorax.
  • 43. Diagnostico diferencial Se debe diferenciar entre un empiema y un PSQT. Aspecto lechoso en el empiema GB Si centrifugamos sobrenadante claro empiema sobrenadante turbio QT o PSQT Si observamos sedimento cristales de colesterol PSQT Medida de TG mayor a 110 mg/dl QT debajo de 50 mg /dl descarto QT Valores entre 50 y 110 analisis de lipoproteinas para demostrar la presencia de Qm QT
  • 44. Características distintivas de derrames quilosos y pseudoquilosos Derrames (pleural o ascitico) Quiloso (quilotórax) Pseudoquiloso Etiología Daño u obstrucción del Conducto Torácico Derrame crónico Causas comunes Trauma, neoplasia, congénito Tuberculosis, pleuritis reumatoide Comienzo Brusco Gradual Apariencia Blanco–lechoso o amarillo-sanguinolento Lechoso o verdoso Examen microscópico Linfocitosis Reacción celular mixta. (a veces, cristales de colesterol) Colesterol < 250 mg/dl > 250 mg/dl Triglicéridos > 110 mg/dl < 50 mg/dl (algunos tienen > 110 mg/dl ) Lipidograma Presencia de quilomicrones Ausencia de quilomicrones
  • 46. LÍQUIDO ASCITICO Los órganos del sistema digestivo que están en la cavidad abdominal son: el hígado, la vesícula biliar, el estómago y los intestinos delgado y grueso.
  • 47. Causas de derrame peritoneal Transudados Por aumento de presión hidrostática o disminución de la presión oncótica      Cirrosis hepática Insuficiencia cardíaca congestiva Hipoproteinemia (S. Nefrótico) Metástasis hepática (difusa) Oclusión de vena porta
  • 48. Causas de derrame peritoneal Debido a aumento de la permeabilidad capilar o disminución de reabsorción linfatica Exudados Infecciones c Neoplasia c Tuberculosis Peritonitis bacteriana primaria Peritonitis bacteriana secundaria Carcinoma metastásico Hepatoma Linfoma Mesotelioma Trauma Pancreatitis Peritonitis biliar Derrame quiloso (Trauma, Linfoma, Tuberculosis, Carcinoma)
  • 49. Líquido Ascitico Indicaciones de Paracentesis  Complicaciones de la cirrosis (PBE)  Sospecha de enfermedad maligna intraabdominal  Ascitis de origen desconocido
  • 50. Determinaciones en el liquido ascítico Muestras: recolección con heparina para fisicoquímico y citológico. Bacteriológico:1 tubo estéril con heparina y un frasco de hemocultivo. Extracción sangre venosa (máximo 2hs de diferencia) Exámenes de laboratorio • Observación macroscópica: color y aspecto • Recuento celular y diferencial • Examen químico: (en L.A. y suero) Proteinas totales Albúmina • Hepatology. 2003 - Jul;38(1): 258-66. Moore KP, et al. The management of ascites in cirrhosis: report on the consensus conference of the internainal Ascites Club.
  • 51. Determinaciones opcionales  Glucosa (neoplasias, infecciones, perforacion intestinal)  LDH (neoplasias, infecciones, perforacion intestinal)  Amilasa (ascitis pancreatica o perforacion intestinal)  Trigliceridos (ascitis quilosa)  Bilirubina (perforación intestinal o de vesícula)  Citología y CEA (neoplasias)  Coloración de GRAM  Tuberculosis (ADA, coloracion ZN, cultivo)
  • 52. Determinaciones no-útiles  pH  Lactato  Colesterol
  • 53. Procesamiento de la muestra (Extracción con jeringa heparinizada) 1. Observación de tubos enviados, elección del más adecuado 2. Homogenización. Observación de color y aspecto 3. Observación microscópica en fresco ( 10x – 40x ) 4. Recuento celular: Células nucleadas (Hematíes - hematocrito) 5. Centrifugación. Extendidos. Coloración 6. Observación de sobrenadante y sedimento 7. Recuento diferencial: Porcentaje de: Neutrofilos, Eosinófilos, Linfocitos, Macrófagos, Células mesoteliales, Otras células. Comentarios Aclaratorios 8. Sobrenandante: Exámenes químicos
  • 54. Gradiente de Albumina GASA = Albumina del suero – Albumina del L. A. ≥ 1.1 g/dl Hipertensión portal < 1.1 g/dl Sin hipertensión portal GASA Alto: Líquidos transudativos no malignos GASA Bajo: Líquidos exudativos malignos o infecciosos Hoefs JC.. Serum protein concentration and portal pressure determine the ascitic fluid protein concentration in patients with chronic liver disease. J Lab Clin Med. 1983 , Aug;102(2):260-73.
  • 56. En el recuento en Cámara de Neubauer se emplea el reticulado central. Para el cálculo, se tiene en cuenta la dilución efectuada, número de cuadrados contados y la altura de la cámara  Cels./ml=  Donde: N = número de células contadas D = inversa de la dilución empleada 10 = para llevar a mm3    N x D x 25 x 10 n° de cuad. contados
  • 57. Peritonitis Bacteriana Espontánea (PBE) Es la infección del Liquido ascítico preexistente, en ausencia de un foco séptico de origen Intraabdominal Complicación frecuente ( 10-30%) de pacientes cirróticos con ascitis. Síntomas: Dolor abdominal, fiebre, alteraciones de la motilidad intestinal, leucocitosis. A veces encefalopatía hepática y fallo renal.
  • 58. Peritonitis Bacteriana Espontánea (PBE) Recuento de neutrofilos >250/mm³ Diagnostico Cultivo positivo (generalmente único germen) Tratamiento: Antibiótico, diuréticos. Control de electrolitos séricos, urea y creatinina. Control a las 48hs.
  • 59. Ascitis Neutrocitica Neutrofilos >250/mm Cultivo negativo Descartar otras causas de aumento  Se trata de manera similar a PBE Neutrofilos <250/mm Bacteriascitis Cultivo positivo (Monomicrobiano) Si hay sintomas, se trata como PBE
  • 60. Peritonitis Bacteriana Secundaria  Causa: Tratable quirúrgicamente (vísceras perforadas, abscesos, etc.)  Cultivo positivo (generalmente poli microbiano)  Neutrófilos >> 250/mm³  Proteínas y LDH elevadas y glucosa baja, ayudan al diagnostico diferencial
  • 61. Grupo de celulas, pueden ser mesoteliales o neoplasicas, se vera con la coloracion.
  • 64.
  • 65.
  • 66.
  • 68.
  • 72. DERRAME PLEURAL Células de Langhans GIEMSA
  • 73. L. Pleural. Célula mesotelial y macrófago. Eritrofagocitosis
  • 78. CÉLULA MESOTELIAL EN MITOSIS GIEMSA (100x)
  • 79. LIQUIDO ASCITICO - MITOSIS ANORMAL GIEMSA (40x)
  • 80. LIQUIDO ASCITICO - MITOSIS ANORMAL GIEMSA (100x)
  • 82. LIQUIDO PLEURAL - ESINOFILIA GIEMSA (40X)
  • 83. Liquido pleural - esinofilia GIEMSA (100X)
  • 86. CELULAS NEOPLASICAS EN LIQUIDO ASCITICO GIEMSA
  • 87. CELULAS NEOPLASICAS EN LIQUIDO PLEURAL GIEMSA
  • 88. CELULAS NEOPLASICAS Y REACCIÓN INFLAMATORIA EN LIQUIDO PLEURAL GIEMSA
  • 90. DERRAME PLEURAL POR ARTRITIS REUMATOIDEA