1. Los puestos de trabajo del siglo XXI
serán para aquellos capaces de
intercambiar ideas, descubrir
soluciones inesperadas, interactuar
con profesionales de las más diversas
áreas, manejar tecnología de avanzada
y manipular técnicas estadísticas.

2. HISTORIA DE LA MALARIA

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


MALARIA: MAL AIRE
PALUDISMO: PANTANO.
1716: LENCIS.
1847: MECHEL Y VIRCHOW.
1880: LUIS ALFONSO LAVERAN
1884: GWERBART.
1891: ROMANOWOSKY.
1897: RONAL ROSS.
1898: GIOVAM BALTISTA GROSS.
1900. MANSON

3. EPIDEMIOLOGIA DE LA MALARIA
RESURGIMIEMTO:
CAMBIOS BIOLOGICOS DEL PARÁSITO
VECTOR.
ASPECTOS SOCIOLOGOS DE LA
COMUNIDAD.
AFECTA : 90 PAISES
INCIDENCIA ANUAL: 300-500 MILLONES
MORTALIDAD : 1,5-2.,7 MILLONES.

4. FACTORES AMBIENTALES DE LA
TRANSMICIÓN DE LAMALARIA
COLOMBIA: 90% - 1.500 MYS SNM
TEMPERATURA: >25 °C
HUMEDAD RELATIVA >70%
PLUVIOSIDAD: >2.000 MM.

5. VECTORES PRINCIPALES EN
COLOMBIA
ANOPHELES ALBIMANUS
ANOPHELES DARLINGI
ANOPHELES NUÑEZTOVAREZ.

6. VECTORES PRINCIPALES EN EL
MUNDO

7. DEPARTAMENTOS CON 90%
CASOS AUTOCTONOS
ANTIOQUIA
CORDOBA
CHOCÓ
GUAVIARES
VALLE
ORINOQUIA
AMAZONIA
GUAJIRA: 3771 CASOS Y
12 MUERTES (1999)

8. PLASMODIUM QUE
AFECTAN AL HOMBRE
Plasmodium ovale.
Plasmodium falciparum.
Plasmodium vivax.
Plasmodium malarie.

9. PLASMODIUM QUE
AFECTAN AL HOMBRE
Plasmodium ovale.
Plasmodium falciparum.
Plasmodium vivax.
Plasmodium malarie.
Plasmodium knowlesi.

10. Plasmodium knowlesi.
CARACTERISTICAS
► El nombre es en honor al Dr. Knowles.
►Primer
Plasmodium transmitido del animal al
hombre.
►Reservorio:
►Vector:
►
Mono fascicularis.
Anopheles leucosphyrus.
Se reproduce cada 24 horas.
La distribución geográfica: Sureste de Asia
(Malasia), se a extendido hasta el este de Filipinas y al
norte de Taiwán .
►
►Inmunidad.

11. Plasmodium knowlesi.

12. P. knowlesi
y P. falciparum

13. P. knowlesi
y P. malariae

14. CICLO DE VIDA DEL PLASMODIUM

16. ALTERACIONES DE LOS
ERITOCITOS
P. falciparum: Glóbulos rojos (todo)
P. ovale:
Reticulocitos
P. vivax:
P. malarie:
P. knowlesi
Glóbulos rojos maduros

17. GLOBULO ROJO
PARASITADO

18. CAMBIOS EN EL GLOBULO
ROJO
1.
2.
3.
4.
5.
Perdida de la
elasticidad.
Citoadherencia
Aumento de fragilidad
Transporte de oxigeno
Liberación de toxina y
antígenos

19. Plasmodium falciparum.
Plasmodium ovale .

20. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. falciparum

21. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. falciparum

22. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. falciparum

23. MORFOLOGIA DE
P. falciparum

24. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. vivax

25. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. vivax

26. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. vivax

27. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. vivax

28. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. vivax

29. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
EN GOTA GRUESA
P. vivax

30. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. malariae

31. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. malarie

32. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. malarie

33. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. ovale

34. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. ovale

35. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. ovale

36. CARACTERISTICAS MORFOLOGICA
P. ovale

37. ARTEFACTOS EN LA COLORACION

38. FORMAS ENCONTRADAS EN SANGRE PERIFERICA

39. GOTA GRUESA

40. MEDULOGRAMA

41. INFECCIONES MIXTAS

42. MECANISMO DE TRANSMISION
DE LA MALARIA
NATURAL
PLACENTARIA
JERINGA
TRANSFUSION
TRANSPLANTE
ORGANO

43. CLINICA DE LA INFECCION
MALARICA
PERIODO DE INCUBACION
a)
b)
c)
Malaria contraída o natural
Malaria inducida
Individuos semiinmunes

44. MANIFESTACIONES
CLINICAS
24 horas
48 horas:
72 horas:
PAROXISMO
P. Kewlesis - maligna
P. falciparum – maligna
P. vivax
P. Ovale
benigna
P. malarie
FRIO–CALOR–SUDORACION-APIREXIA

45. DIAGNOSTICO DE LA
MALARIA
I.
METODOS PARASITOLOGICOS
A. DIAGNOSTICO MICROSCOPICO
 Gota Gruesa
 Extendido de sangre periférica
 Colorantes fluorescentes
B. DIAGNOSTICO POR TECNICA DE BIOLOGIA MOLECULAR
 Sondas de DNA
 Reacción en cadena de polimerasa (PCR)

46. DIAGNOSTICO DE LA
MALARIA
II. METODOS INMUNOLOGICO
1.Detección de antígeno del parásito
a)
b)
c)
RIA
Precipitación en gel
Inmunocromatografia: HRP II
PLDH
2. Detección de anticuerpos circulantes en el
huésped específico del parásito

47. TOMA DE MUESTRA
¿ Cuál es el mejor momento para la toma de
muestra?
¿ Qué tipo de sangre se toma?
¿Cuál es la Prueba de Oro ?
¿Cuál es la coloración utilizada?
¿Cuántas laminas se le hacen a cada
paciente?

48. COLORACION DE GOTA
Previamente se realiza la placa y se deja secar temperatura ambiente.
GRUESA
Se realiza la inmersión de la placa en azul de metilo por espacio de 1 a 3
segundos.
Luego se enjuaga con el buffer de malaria.
Se prepara la solución de la siguiente manera: (por placa).
-3
ml de solución buffer.
-1
gota de solución A: azul de metileno.
-1
gota de solución B: eosina amarillenta.
Se mezcla
Se ubica la placa boca abajo sobre la lamina cóncava y se le adiciona el
solución colorante preparado por espacio de 9 minutos.
Por ultimo se deja secar a temperatura ambiente.
Nota: En el extendido de sangre periférica el tiempo de coloración es
de 18 minutos.

49. TOMA DE GOTA GRUESA

50. Evaluación externa indirecta del
desempeño (EEID)
ENVIAR SEGÚN LO ESTABLECIDO: Formato cara A y B
100% laminas positivas
10% laminas negativas
0% cero caso
Ficha epidemiológica de malaria
EVALUA: Concordancia del recuento
Índice kappa general (P/N)
Índice especie
Errores técnicos

53. Evaluación externa indirecta del
desempeño (EEID)
ENVIAR SEGÚN LO ESTABLECIDO: Formato cara A y B
100% laminas positivas
10% laminas negativas
0% cero caso
Ficha epidemiológica de malaria
EVALUA: Concordancia del recuento
Índice kappa general (P/N)
Índice especie
Errores técnicos

54. RECUENTO PARASITARIO
GOTA GRUESA:
•Recuento
de glóbulos blancos
•Recorridos
de 100 glóbulos blancos
Plasmodium falciparum: diferenciar estadios.
Otras especies: no se diferencian los estadios.
FORMULA: Nº de parásitos x Nº de G.B
100
RESULTADO : P. vivax : 2300 Parásitos/ul
P. falciparum :5000 Trofozoitos/ul
1200 Gametocitos/ul
NOTA: Se observaron 20 esquizontes

55. CONCORDANCIA DEL RECUENTO
Diferencia del recuento:
Recuento del 2º lector– recuento 1º lector X 100
Recuento del 1ª lector ( Supervisado)
Concordancia del recuento:
100 – diferencia del recuento = %
Valores de Referencia:
0 -24: Nulo
25- 49: Bajo
50-74: Medio
75-99: Alto
100: Perfecto
=%

56. CONCORDANCIA DEL RECUENTO
EJEMPLO:
1. Diferencia del recuento : 12000-8000
x 100 = 33.3%
12000
2. Concordancia del recuento : 100 – 33.3 = 67%
Valores de Referencia: 0 -24: Nulo
25- 49: Bajo
50-74: Medio
75-99: Alto
100: Perfecto

57. Evaluación externa indirecta del
desempeño (EEID)
ENVIAR SEGÚN LO ESTABLECIDO: Formato cara A y B
100% laminas positivas
10% laminas negativas
0% cero caso
Ficha epidemiológica de malaria
EVALUA: Concordancia del recuento
Índice kappa general (P/N)
Índice especie
Errores técnicos

58. ÍNDICE KAPPA
(GENERAL Y ESPECIE)

59. INDICE KAPPA
(GENERAL Y ESPECIE)

60. ÍNDICE KAPPA
(GENERAL Y ESPECIE)
Observador 2 (Supervisor)
+
+
Observador 1
-
-

61. VALORES Y SIGNIFICADO DEL
ÍNDICE KAPPA
IK = 1.0 Excelente
I K = > 0.8, Bueno.
IK = 0.79 – 0.4, Moderado. (readiestramiento)
IK = <0.39, Pobre. Asistencia técnica.

62. Evaluación externa indirecta del
desempeño (EEID)
ENVIAR SEGÚN LO ESTABLECIDO: Formato cara A y B
100% laminas positivas
10% laminas negativas
0% cero caso
Ficha epidemiológica de malaria
EVALUA: Concordancia del recuento
Índice kappa general (P/N)
Índice especie
Errores técnicos

64. FORMULA DE ERRORES TECNICOS
1 lamina
8 laminas
X=
8 errores
X
8 x8
64 errores
1
7 errores
X = 7 x 100
64
= 64 errores
100% del envió
X
= 10.9%

65. EVALUACIÓN EXTERNA DIRECTA
DEL DESEMPEÑO (EEDD)
PROMEDIO PONDERAL:
Valores de referencia:
< 95%: Malo
>95%: Sirve de referencia, se puede certificar
Especie
50%
Positivo/
Negativo
33.3%
Estadios
% Final
16.6%
100%

66. PROMEDIO PONDERAL

69. CONCLUSIONES
EEID: ENVIAR SEGÚN LO ESTABLECIDO: Formato cara A y B
100% laminas positivas
10% laminas negativas
0% cero caso
EVALUA: Concordancia del recuento
Índice kappa general (P/N)
Índice especie
Errores técnicos
EEDD: Promedio ponderal
Concordancia del recuento