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Introducción
 El nombre S10 hace alusión al nombre del polímero
empleado Silicona S10 de la marca comercial
Biodur ®
 Es la técnica de plastinación mas reconocida a nivel
mundial y es apropiada para cuerpos componentes
anatómicos casi de cualquier naturaleza.
 Se recomienda iniciarse en plastinación con esta
técnica antes de incursionar en técnicas mas
avanzadas.
2
Luis Miguel Acevedo.
Facultad de Medicina, UdeA.
Etapas
 Fijación
 Deshidratación
 Impregnación
 Curado
3
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
Generalmente se recomienda fijar, pero por ejemplo
articulaciones frescas (huesos y ligamentos) se pueden
deshidratar directamente (Leshca, University of
Vienna).
Fijación
4
Articulación de rodilla
plastinada UdeA
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
Razones para fijar
 Poca experiencia reportada
con especímenes sin fijación
 La incorporación física del
fijador da firmeza al tejido, lo
que reduce
significativamente la
susceptibilidad a la
retracción relacionada con el
proceso de plastinación.
5
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
Desventaja de la fijación
Pérdida de Color
6
¿Cómo disminuir este efecto?
 Fijación Corta
 Fijación a +5ºC
 Freeze Fixation (von Hagens)
 Solución de Kaiserling
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
Solución de Kaiserling
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
7
German, Patologist
February 3, 1869 - August 20, 1942
Este fijador es una solución acuosa de
formalina, nitrato de potasio y acetato
de potasio.
¿Con que fijar?
 Se fija con una solución de Formalina al 5%. (5 p.b.v
de formalin+ 95 p.b.v de agua)
 Formalina: Solución comercial de gas de
formaldehído en agua, la concentración de
formaldehído oscila entre un 35% y 38%.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
8
Métodos de fijación
 Inmersión
 Apropiado para especímenes
delgados
 Infiltración
 Inyección directa en el
espécimen, no a través de los vasos
sanguíneos. Apropiado para
especímenes muy gruesos que no
pueden ser inyectados por vasos
sanguíneos. (Ej.
Lengua, laringe, músculos)Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
9
Métodos de Fijación
 Inyección
 Intravascular, apropiado para cuerpos
enteros o extremidades.
 Perfusión
 Similar a la inyección, se desplaza la sangre
con el agente fijador.
 Dilatación
 Distención de órganos huecos a través de
presión hidrostática. ( Ej. Corazón y riñones)
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
10
Principios de
Deshidratación
En plastinación como en histología deshidratación
significa reemplazar el agua del espécimen por un
solvente orgánico miscible en agua.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
12
Agentes deshidratantes
Su estructura química puede variar:
 Monohídricos
 Metanol, etanol e isopropanol
 Dihídricos
 Monoetilen glicol
 Dietilen glicol
 Trihídricos
 Glicerina
 Cetonas
 Acetona
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
13
Volatile Intermedium
 Cualquier solvente orgánico con presión de vapor
alta y y bajo punto de ebullición (+35 ºC- 60 ºC).
 Puede ser miscible en agua (Ej. Acetona)
 Puede ser no miscible en agua (Ej. Cloruro de
metileno)
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
14
Difusión
 Del latin diffundere = expandir o dipersar.
 Es la mezcla gradual de diferentes sustancias sin
usar fuerzas externas.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
15
Deshidratación en el
concepto de Plastinación
Para producir un plastinado agua y lípidos son
reemplazados por un polímero curable.
1. Deshidratación: Agua y parte de los lípidos son
reemplazados por un solvente orgánico miscible en
agua.
2. El liquido deshidratante es intercambiado por un Volatile
intermedium. Si un Volatile intermedium como acetona
es usado para dehidratación el paso 2 se obvia.
3. Impregnación Forzada: El Volatile Intermedium en el
especimes es reemplazado por el polímero curable.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
16
Procedimiento básico
Deshidratación ascendente (procedimiento mas conocido).
 Consiste en poner el componente anatómico en baños de
deshidrataciones seriales con concentraciones ascendentes, el
primer baño con deshidratante al 50%-70% y el último con
deshidratante al 100%.
Frezze Substitution
 Hielo del especimen es reemplazado por el agente
deshidratante a -24ºC.
 El agente usado es acetona y desde el promer baño se usa al
100%
En ambos prcedimeintos terminan cuando el contenido de agua en
el componentes es inferior al 1%Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
17
Procedimiento básico
 El reemplazo del agua y lípidos del tejido se da por
difusión.
 Entre más contenido acuoso tenga el tejido mas
demorará la deshidratación.
 El contenido de agua de la solución de
deshidratación se determina por su densidad.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
18
Notas Importantes
 La relación entre el peso del componente y el
volumen de deshidratante debe ser 10:1
 Un componente fresco o fijado no puede
simplemente ser sumergido en el líquido
deshidratante , ya que este se encogerá
(shrinkage).
 No poner el componente anatómico en acetona o
etanol al 100% a temperatura ambiente para no
causar retracción extrema.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
19
Desengrasado
Durante la deshidratación los componentes también son
desengrasados. Este proceso depende de:
1. Tipo de deshidratante: Cloruro de Metileno más fuerte
que acetona.
2. Temperatura: Acetona a +25ºC mucho mas fuerte que a
-25ºC
3. Relación entre el volumen del tejido adiposo y el
volumen del baño de deshidratación.
4. Duración de la deshidratación.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
20
Cronograma de trabajo
(Freeze substitution)
1. Lavar especimenes y enfriar a +1ºC - +5ºC.
2. Preenfriar Acetona a -25ºC
3. Sumergir componente anatómico en acetona
4. Cambiar acetona.
Por razones de seguridad se deben hacer los cambios
de acetona a -25ºC
 Estar debajo del punto de inflamación (-19ºC)
 Persión de vapor a esta Tº es muy baja.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
21
Cronograma de trabajo
(Freeze substitution)
Casos especiales:
 Cerebro: Mantener
deshidratación por encima
del 98% para disminuir
retracción
 Intestinos: Para
mantener flexibilidad se
recomienda que estos
permanezcan lo menos
posible en acetona .
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
22
Duración de la
Deshidratación
 Usualmente acetona es cambiada 3 veces si la
razón es 10:1.
 Cerebro Humano: Toma 2 semanas en el primer
baño , 1 semanaen el segundo y 4 días en el
tercero.
 Riñones y articulaciones: 3 – 4 semanas
 Cabezas e hígados: 5-6 semanas
 Intestinos: 5 a 10 días.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
23
Protocolo Universidad de
Murcia, España
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
24
Protocolo Universidad de
Murcia, España
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
25
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
26
Principios y definición
 Es el paso central y más importante en plastinación.
 Proceso en el cual, a través de una fuerza
externa, el tejido es impregnado con polímero.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
27
Principio y definición
 Elementos del Proceso
 El componente saturado con Intermedium Volatile
(Acetona o Cloruro de Metileno) es sumergide en el
polímero preparado.
 El I.V una alta presión de vapor y un bajo punto de
ebullición. (Acetona +56ºC – Cloruro de Metileno
+40ºC).
 En contraste el polímero tiene baja presión de vapor
y una alto punto de ebullición.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
28
Principio y definición
 Gracias a la diferencia de
presión de vapor, el I.V es
extraído del espécimen y
evaporado a través del
polímero.
 Por la extracción se genera
una diferencia de presión
entre el espécimen y el baño
de impregnación, este
diferencia de presión causa
que el polímero ingrese al
espécimen
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
29
Velocidad de
Impregnación
 Depende de propiedades del polímero y del
espécimen
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
30
Propiedades Velocidad de Impregnación
Recomendada
Lenta Rápida
Polímero
-Viscocidad Alta Baja
-Tiempo de
procesado
Largo Corto
Espécimen
-Grosor Grueso Delgado
-Firmeza Baja Alta
-Densidad Alta Baja
Preparación de la
Impregnación Forzada
 Fijación y deshidratación
 Preparación del polímero
(Biodur S10)
 La temperatura de S10
debe ser inferior a 25ºC
 Adicionar elongador de
cadenas S3 (RT) y
mezclar, por cada 50Kg de
S10 / 0.5L S3.
 Poner en vacío y deairear
(Deaereation)
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
31
Preparación de la
Impregnación Forzada
 Introducción de los componentes
 No deben secarse antes de sumergirlos, si esto pasa
se verán manchas blancas después de la
plastinación.
 El componente no debe tocar el fondo ni las paredes
de la cámara de vacío.
 Componentes deshidratados con acetona flotarán en
S10 (densidad Acetona 0.79 – Densidad S10 =1).
 Componentes desengrasados con cloruro de
metileno no flotarán (densidad 1.3).
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
32
Preparación de la
Impregnación Forzada
 Temperatura
 Silicona
 S10 -25ºC
 NCSX -25ºC ó RT
 PR10 RT
 Sheet Plastination
 P40 RT
 E12 RT
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
33
Preparación de la
Impregnación Forzada
 Inicio del Vacío
 Silicona
 24 H despues de la inmersión: Ecualización por
difusión de la diferencia de [ ] entre VI y la mezcla de
S10.
 Sheet Plastination
 P40 : Inmediatamente con control de luz U.V
 E12 : Inmediatamente (tiempo de procesado 1-2 días)
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
34
Velocidad de bombeo y
ajuste de vacío
 El criterio principal para la intensidad del vacío es el
burbujeo.
 Si la I.F se hace en frio el burbujeo será lento.
 Si la I.F se hace a R.T se hace más rápido ya que
los polímeros son menos viscosos y y de menor
timpeo de procesamiento.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
35
Velocidad de bombeo y
ajuste de vacío
 Velocidad de bombeo:
 Volumen de gas bombeado en un periodo de tiempo
(m3/h). Cada bomba de vacío tiene su velocidad de
bombeo definida.
 Velocidad de bombeo recomendada:
 1 metro cúbico por cada por cada 10 kg de polímero
S10. 1.5 m3 de E-12
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
36
Tamaño de la cámara de
vacío
Velocidad
Hasta 50 L 1.5 m3/h
Hasta 500 L 12 m3/h
Velocidad de bombeo y
ajuste de vacío
 La impregnación nunca debe ser muy rápida se
debe permitir que el polímero tenga tiempo de
penetrar esas partes des componente donde el
solvente esta saliendo.
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
37
Proceso de impreganación
 Primera fase: 50 mmHg
 Segunda Fase: Válvulas
medianamente cerradas, 15
mmHg
 Tecera Fase: Válvulas
completamente
cerradas, 5mmHg.
 Nota: Referencia mas
importante es el burbujeo
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
38
Equipos importantes
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
39
Fin de la impregnación
 Esta termina cuando la presión es igual o menor a
5mmHg y hay ausencia de burbujas.
 Se apaga la bomba, se abren válvulas y se espera
24 horas antes de retirar los componentes de la
cámara de vacío.
 Se tienen componentes anatómicos listos para un
proceso de curado
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
40
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
UdeA
41
Referencias
 Von Hagens, Heidelberg Plastination Folder, 1986
Imágenes
 http://www.dmns.org/media/486019/bw3_44%20plastination%20panel%20100jpg_500x12
24.jpg
 http://www.popsci.com
 http://www.silicones-inc.com
42
Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina
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Plastinación

  • 1.
  • 2. Introducción  El nombre S10 hace alusión al nombre del polímero empleado Silicona S10 de la marca comercial Biodur ®  Es la técnica de plastinación mas reconocida a nivel mundial y es apropiada para cuerpos componentes anatómicos casi de cualquier naturaleza.  Se recomienda iniciarse en plastinación con esta técnica antes de incursionar en técnicas mas avanzadas. 2 Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina, UdeA.
  • 3. Etapas  Fijación  Deshidratación  Impregnación  Curado 3 Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA
  • 4. Generalmente se recomienda fijar, pero por ejemplo articulaciones frescas (huesos y ligamentos) se pueden deshidratar directamente (Leshca, University of Vienna). Fijación 4 Articulación de rodilla plastinada UdeA Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA
  • 5. Razones para fijar  Poca experiencia reportada con especímenes sin fijación  La incorporación física del fijador da firmeza al tejido, lo que reduce significativamente la susceptibilidad a la retracción relacionada con el proceso de plastinación. 5 Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA
  • 6. Desventaja de la fijación Pérdida de Color 6 ¿Cómo disminuir este efecto?  Fijación Corta  Fijación a +5ºC  Freeze Fixation (von Hagens)  Solución de Kaiserling Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA
  • 7. Solución de Kaiserling Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 7 German, Patologist February 3, 1869 - August 20, 1942 Este fijador es una solución acuosa de formalina, nitrato de potasio y acetato de potasio.
  • 8. ¿Con que fijar?  Se fija con una solución de Formalina al 5%. (5 p.b.v de formalin+ 95 p.b.v de agua)  Formalina: Solución comercial de gas de formaldehído en agua, la concentración de formaldehído oscila entre un 35% y 38%. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 8
  • 9. Métodos de fijación  Inmersión  Apropiado para especímenes delgados  Infiltración  Inyección directa en el espécimen, no a través de los vasos sanguíneos. Apropiado para especímenes muy gruesos que no pueden ser inyectados por vasos sanguíneos. (Ej. Lengua, laringe, músculos)Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 9
  • 10. Métodos de Fijación  Inyección  Intravascular, apropiado para cuerpos enteros o extremidades.  Perfusión  Similar a la inyección, se desplaza la sangre con el agente fijador.  Dilatación  Distención de órganos huecos a través de presión hidrostática. ( Ej. Corazón y riñones) Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 10
  • 11.
  • 12. Principios de Deshidratación En plastinación como en histología deshidratación significa reemplazar el agua del espécimen por un solvente orgánico miscible en agua. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 12
  • 13. Agentes deshidratantes Su estructura química puede variar:  Monohídricos  Metanol, etanol e isopropanol  Dihídricos  Monoetilen glicol  Dietilen glicol  Trihídricos  Glicerina  Cetonas  Acetona Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 13
  • 14. Volatile Intermedium  Cualquier solvente orgánico con presión de vapor alta y y bajo punto de ebullición (+35 ºC- 60 ºC).  Puede ser miscible en agua (Ej. Acetona)  Puede ser no miscible en agua (Ej. Cloruro de metileno) Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 14
  • 15. Difusión  Del latin diffundere = expandir o dipersar.  Es la mezcla gradual de diferentes sustancias sin usar fuerzas externas. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 15
  • 16. Deshidratación en el concepto de Plastinación Para producir un plastinado agua y lípidos son reemplazados por un polímero curable. 1. Deshidratación: Agua y parte de los lípidos son reemplazados por un solvente orgánico miscible en agua. 2. El liquido deshidratante es intercambiado por un Volatile intermedium. Si un Volatile intermedium como acetona es usado para dehidratación el paso 2 se obvia. 3. Impregnación Forzada: El Volatile Intermedium en el especimes es reemplazado por el polímero curable. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 16
  • 17. Procedimiento básico Deshidratación ascendente (procedimiento mas conocido).  Consiste en poner el componente anatómico en baños de deshidrataciones seriales con concentraciones ascendentes, el primer baño con deshidratante al 50%-70% y el último con deshidratante al 100%. Frezze Substitution  Hielo del especimen es reemplazado por el agente deshidratante a -24ºC.  El agente usado es acetona y desde el promer baño se usa al 100% En ambos prcedimeintos terminan cuando el contenido de agua en el componentes es inferior al 1%Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 17
  • 18. Procedimiento básico  El reemplazo del agua y lípidos del tejido se da por difusión.  Entre más contenido acuoso tenga el tejido mas demorará la deshidratación.  El contenido de agua de la solución de deshidratación se determina por su densidad. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 18
  • 19. Notas Importantes  La relación entre el peso del componente y el volumen de deshidratante debe ser 10:1  Un componente fresco o fijado no puede simplemente ser sumergido en el líquido deshidratante , ya que este se encogerá (shrinkage).  No poner el componente anatómico en acetona o etanol al 100% a temperatura ambiente para no causar retracción extrema. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 19
  • 20. Desengrasado Durante la deshidratación los componentes también son desengrasados. Este proceso depende de: 1. Tipo de deshidratante: Cloruro de Metileno más fuerte que acetona. 2. Temperatura: Acetona a +25ºC mucho mas fuerte que a -25ºC 3. Relación entre el volumen del tejido adiposo y el volumen del baño de deshidratación. 4. Duración de la deshidratación. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 20
  • 21. Cronograma de trabajo (Freeze substitution) 1. Lavar especimenes y enfriar a +1ºC - +5ºC. 2. Preenfriar Acetona a -25ºC 3. Sumergir componente anatómico en acetona 4. Cambiar acetona. Por razones de seguridad se deben hacer los cambios de acetona a -25ºC  Estar debajo del punto de inflamación (-19ºC)  Persión de vapor a esta Tº es muy baja. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 21
  • 22. Cronograma de trabajo (Freeze substitution) Casos especiales:  Cerebro: Mantener deshidratación por encima del 98% para disminuir retracción  Intestinos: Para mantener flexibilidad se recomienda que estos permanezcan lo menos posible en acetona . Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 22
  • 23. Duración de la Deshidratación  Usualmente acetona es cambiada 3 veces si la razón es 10:1.  Cerebro Humano: Toma 2 semanas en el primer baño , 1 semanaen el segundo y 4 días en el tercero.  Riñones y articulaciones: 3 – 4 semanas  Cabezas e hígados: 5-6 semanas  Intestinos: 5 a 10 días. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 23
  • 24. Protocolo Universidad de Murcia, España Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 24
  • 25. Protocolo Universidad de Murcia, España Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 25
  • 26. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 26
  • 27. Principios y definición  Es el paso central y más importante en plastinación.  Proceso en el cual, a través de una fuerza externa, el tejido es impregnado con polímero. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 27
  • 28. Principio y definición  Elementos del Proceso  El componente saturado con Intermedium Volatile (Acetona o Cloruro de Metileno) es sumergide en el polímero preparado.  El I.V una alta presión de vapor y un bajo punto de ebullición. (Acetona +56ºC – Cloruro de Metileno +40ºC).  En contraste el polímero tiene baja presión de vapor y una alto punto de ebullición. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 28
  • 29. Principio y definición  Gracias a la diferencia de presión de vapor, el I.V es extraído del espécimen y evaporado a través del polímero.  Por la extracción se genera una diferencia de presión entre el espécimen y el baño de impregnación, este diferencia de presión causa que el polímero ingrese al espécimen Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 29
  • 30. Velocidad de Impregnación  Depende de propiedades del polímero y del espécimen Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 30 Propiedades Velocidad de Impregnación Recomendada Lenta Rápida Polímero -Viscocidad Alta Baja -Tiempo de procesado Largo Corto Espécimen -Grosor Grueso Delgado -Firmeza Baja Alta -Densidad Alta Baja
  • 31. Preparación de la Impregnación Forzada  Fijación y deshidratación  Preparación del polímero (Biodur S10)  La temperatura de S10 debe ser inferior a 25ºC  Adicionar elongador de cadenas S3 (RT) y mezclar, por cada 50Kg de S10 / 0.5L S3.  Poner en vacío y deairear (Deaereation) Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 31
  • 32. Preparación de la Impregnación Forzada  Introducción de los componentes  No deben secarse antes de sumergirlos, si esto pasa se verán manchas blancas después de la plastinación.  El componente no debe tocar el fondo ni las paredes de la cámara de vacío.  Componentes deshidratados con acetona flotarán en S10 (densidad Acetona 0.79 – Densidad S10 =1).  Componentes desengrasados con cloruro de metileno no flotarán (densidad 1.3). Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 32
  • 33. Preparación de la Impregnación Forzada  Temperatura  Silicona  S10 -25ºC  NCSX -25ºC ó RT  PR10 RT  Sheet Plastination  P40 RT  E12 RT Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 33
  • 34. Preparación de la Impregnación Forzada  Inicio del Vacío  Silicona  24 H despues de la inmersión: Ecualización por difusión de la diferencia de [ ] entre VI y la mezcla de S10.  Sheet Plastination  P40 : Inmediatamente con control de luz U.V  E12 : Inmediatamente (tiempo de procesado 1-2 días) Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 34
  • 35. Velocidad de bombeo y ajuste de vacío  El criterio principal para la intensidad del vacío es el burbujeo.  Si la I.F se hace en frio el burbujeo será lento.  Si la I.F se hace a R.T se hace más rápido ya que los polímeros son menos viscosos y y de menor timpeo de procesamiento. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 35
  • 36. Velocidad de bombeo y ajuste de vacío  Velocidad de bombeo:  Volumen de gas bombeado en un periodo de tiempo (m3/h). Cada bomba de vacío tiene su velocidad de bombeo definida.  Velocidad de bombeo recomendada:  1 metro cúbico por cada por cada 10 kg de polímero S10. 1.5 m3 de E-12 Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 36 Tamaño de la cámara de vacío Velocidad Hasta 50 L 1.5 m3/h Hasta 500 L 12 m3/h
  • 37. Velocidad de bombeo y ajuste de vacío  La impregnación nunca debe ser muy rápida se debe permitir que el polímero tenga tiempo de penetrar esas partes des componente donde el solvente esta saliendo. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 37
  • 38. Proceso de impreganación  Primera fase: 50 mmHg  Segunda Fase: Válvulas medianamente cerradas, 15 mmHg  Tecera Fase: Válvulas completamente cerradas, 5mmHg.  Nota: Referencia mas importante es el burbujeo Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 38
  • 39. Equipos importantes Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 39
  • 40. Fin de la impregnación  Esta termina cuando la presión es igual o menor a 5mmHg y hay ausencia de burbujas.  Se apaga la bomba, se abren válvulas y se espera 24 horas antes de retirar los componentes de la cámara de vacío.  Se tienen componentes anatómicos listos para un proceso de curado Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 40
  • 41. Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA 41
  • 42. Referencias  Von Hagens, Heidelberg Plastination Folder, 1986 Imágenes  http://www.dmns.org/media/486019/bw3_44%20plastination%20panel%20100jpg_500x12 24.jpg  http://www.popsci.com  http://www.silicones-inc.com 42 Luis Miguel Acevedo. Facultad de Medicina UdeA