El documento describe los procedimientos para realizar un antibiograma. Incluye la preparación de la placa, la inoculación bacteriana, la aplicación de discos de antibióticos, la incubación y la lectura e interpretación de los resultados. El antibiograma determina la sensibilidad de un microorganismo a diferentes antimicrobianos para guiar el tratamiento y comprender los mecanismos de resistencia.
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OBJETIVOS DE LA PRÁCTICA
• Enumerar y describir los pasos requeridos para la realización del antibiograma.
• Comprender las bases teóricas y metodológicas del antibiograma.
• Mencionar las variables que deben ser controladas cuando se realiza la difusión por
disco, y reconocer los problemas que podrían ocurrir si dichas variables no son
controladas apropiadamente.
• Realizar la interpretación del antibiograma basados en las recomendaciones del
Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) de Norteamérica, categorizando las
bacterias/antibióticos específicos en sensibles, intermediarios y resistentes.
7. ANTIBIOGRAMA (Susceptibilidad Antimicrobiana)
• Estudio de la sensibilidad “in vitro”
de un microorganismo patógeno
frente a las sustancias
antimicrobianas.
• Se basa en el patrón de resistencia
de cada bacteria.
• Establece la terapia antibiótica
adecuada.
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9. ANTIBIOGRAMA
• No se informa en el ATBgrama:
– Resistencia intrínseca
– Sensibilidad que puede inferirse por otros
antibióticos
• Patrones de ATBgrama poco
frecuentes o imposibles
requieren confirmación.
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10. ANTIBIOGRAMA - UTILIDAD
• Terapia antimicrobiana dirigida.
• Conocer el fenotipo de
sensibilidad de un
microoorganismo.
• Perfil epidemiológico
institucional.
• Seguimiento y análisis de brotes.
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11. ANTIBIOGRAMA - IMPORTANCIA
• Prueba microbiológica de más
relevancia en el cuidado directo de los
pacientes.
1.Traducción de las CIM o los puntos de
corte en categorías de sensibilidad.
2. Valor predictivo de las pruebas de
sensibilidad “in vitro”.
3.Importancia de los informes de
sensibilidad.
4.Detección directa de los genes de
resistencia.
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12. ACCIÓNANTIMICROBIANA
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ConcentraciónMínimaInhibitoria(CMI)Laconcentración másbajadeun
antimicrobianocapazdedetener el crecimiento
ConcentraciónMínimaBactericida(CMB)Laconcentración másbajadeun
antimicrobianocapaz dedestruir
14. CATEGORÍASCLÍNICAS
• Sensible(S): Una infección puede ser tratada con la
dosis de ATB recomendada para el tipo de
infección y la especie infectante.
• Intermedio (I): Las cepas bacterianas pueden ser
inhibidas por concentraciones del ATB superiores a
las obtenidas con las dosis habituales.
• Resistente (R): Las cepas bacterianas no son
inhibidas por las concentraciones séricas del
antibiótico normalmente alcanzadas.
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18. ANTIBIOGRAMA CUALITATIVO
MÉTODO DE DISCO DIFUSIÓN EN AGAR (KIRBY BAUER)
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Principio: medida de halo de inhibición (mm)
19. PASOS A SEGUIR:
• Agite la suspensión bacteriana para asegurarse que
esté bien mezclada.
• Sumerja un hisopo de algodón estéril en la
suspensión. Remueva el exceso de líquido.
• Colocar discos de antibióticos dentro de los 15
minutos siguientes a la inoculación de la placa MHA.
• Invierta las placas MHA y colóquelas dentro de la
incubadora a 35 ± 2°C
20. ANTIBIOGRAMA CUALITATIVO
MÉTODO DE DISCO DIFUSIÓN EN AGAR (KIRBY BAUER)
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HALO DE INHIBICIÓN.
21. • El diámetro de los discos según las normas de la
Organización Mundial de la Salud (OMS) debe ser de
6 mm.
• Distribuir los discos uniformemente, de modo que
estén a una distancia mínima de 24 mm de centro a
centro
PASOS A SEGUIR:
22. PASOS A SEGUIR:
• Medir los diámetros de los halos de inhibición usando
una regla o caliper.
27. DILUCIÓN
EN TUBO
Aerobiosis
~24 H - 37ºC
Agar
Caldo + droga en concentraciones crecientes
Caldo
Control
0,0625µg/mL -1024,0 µg/mL
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ANTIBIOGRAMA CUANTITATIVO
DETERMINACIÓN DE CONCENTRACIÓN INHIBITORIAMÍNIMA(MIC)
CIM
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
Inóculo
estandarizado
28. DILUCIÓN
EN TUBO
Aerobiosis
~24 H - 37ºC
Agar
Caldo + droga en concentraciones crecientes
Caldo
Control
0,0625µg/mL -1024,0 µg/mL
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ANTIBIOGRAMA CUANTITATIVO
DETERMINACIÓN DE CONCENTRACIÓN INHIBITORIAMÍNIMA(MIC)
CIM
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
Inóculo
estandarizado
Concentración
más débil de un
antibiótico
capaz de inhibir
el crecimiento
bacteriano
29. Aerobiose
24h - 35ºC
Suspensão
bacteriana (0,5
McFarland)
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Controle Concentração
InibitóriaMínima
Replicador deSteers Ágar + Droga
ANTIBIOGRAMA CUANTITATIVO
DETERMINACIÓN DE CONCENTRACIÓN INHIBITORIA MÍNIMA (MIC)
DILUCIÓN
EN PLACA
32. ANTIBIOGRAMA CUANTITATIVO
DETERMINACIÓN DE CONCENTRACIÓN INHIBITORIA MÍNIMA (MIC)
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E-TEST
(Pruebaepsilométrica)
33. ANTIBIOGRAMA CUANTITATIVO
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DETERMINACIÓN DE CONCENTRACIÓN INHIBITORIAMÍNIMA(MIC)
Varios estudios demuestran que una MIC determinada por Etest® presenta
concordancia con los métodos de dilución en agar o tubo, para diferentes
antimicrobianos, en general con una variación permitida de +/- 1 dilución.
E-TEST
(Pruebaepsilométrica)
34. ANTIBIOGRAMA CUANTITATIVO
DETERMINACIÓN DE CONCENTRACIÓN INHIBITORIA MÍNIMA (MIC)
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E-TEST
(Pruebaepsilométrica)
37. 1. Identificación del microorganismo (género –
especie)
2. Análisis de fenotipos:
susceptibilidad/resistencia
a) Grupos (familias) de agentes antimicrobianos
b) Indicadores de resistencia a los antimicrobianos
3. Definir fenotipo
a) Fenotipos comunes
b) Fenotipos inusuales
c) Fenotipos “imposibles”
4. Deducir mecanismos bioquímicos de
resistencia
5. Importancia clínica de la resistencia
6. Redefinir categorías de identificación clínica
LECTURA INTERPRETADA DEL ANTIBIOGRAMA
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Triángulo de Davis: en él se establecen los tres elementos necesarios que se necesitan ante una infección como son Huésped, Microorganismo y Antimicrobiano
El antibiograma es una prueba de laboratorio destinada a estudiar la susceptibilidad anti-microbiana de las bacterias aisladas a partir de muestras biológicas provenientes de los pacientes infectados con el objetivo de ayudar a establecer la terapia antibiótica más apropiada para cada caso.
Se expresa en función del diametro del Halo ( De no crecimiento) formado alrededor del disco del ATB en la superficie de un medio de cultivo sembradoi con la bacteria a estudiar.
El fenotipo de sensibilidad o de resistencia se define como el conjunto de datos obtenidos en el antibiograma para antibióticos de la misma familia o relacionados por mecanismos de actuación comunes o mecanismos de resistencia compartidos. Se clasifican en habituales, raros e imposibles18.
Los primeros, fenotipos habituales, recogen los aislamientos con mecanismos de resistencia cuya presencia es epidemiológicamente normal en el medio donde se realiza el estudio de sensibilidad. Como ejemplo clásico incluiríamos la resistencia a la penicilina, la sensibilidad a la oxacilina en S. aureus por producción de penicilinasa
Los halos de inhibición están relacionados con la “concentración inhibitoria mínima” (CIM), y es esta relación la que sirve para establecer los valores para la interpretación del antibiograma.
-CIM: CONCENTRACION MINIMA INHIBITORIA): se define como la concentración más débil de un antibiótico capaz de inhibir el crecimiento bacteriano al cabo de 18 – 24 horas de incubación .
- CMB ( CONCENTRAC MINIMA BACTERICIDA) :Es la menor concentración capaz de matar el 99,9% dela población bacteriana.
Los halos de inhibición están relacionados con la “concentración inhibitoria mínima” (CIM), y es esta relación la que sirve para establecer los valores para la interpretación del antibiograma.
• La CIM se define como la concentración más débil de un antibiótico capaz de inhibir el crecimiento visible de una cepa bacteriana al cabo de 18 – 24 horas de incubación .
Microorganismo sensible (S): Categoría clínica definida para las pruebas de susceptibilidad in vitro. Implica que una infección debida a la cepa bacteriana estudiada puede ser tratada apropiadamente con la dosis de antibiótico recomendada para el tipo de infección y la especie infectante, a menos que existan contraindicaciones.
• Microorganismo intermedio (I): Categoría clínica definida para las pruebas de susceptibilidad in vitro. Esta categoría incluye las cepas bacterianas que pueden ser inhibidas por concentraciones del antibiótico superiores a las obtenidas con las dosis habituales, siempre y cuando se puedan aumentar las dosis empleadas y/o que el antibiótico se concentre fisiológicamente en el tejido o lugar infectado.
• Microorganismo resistente (R): Categoría clínica definida para las pruebas de susceptibilidad in vitro Las cepas bacterianas incluidas en esta categoría no son inhibidas por las concentraciones séricas del antibiótico normalmente alcanzadas con las dosis habituales del mismo, poseen comúnmente mecanismos específicos de resistencia bacteriana o la eficacia clínica del antibiótico frente a la bacteria no ha sido comprobada
Permitir que la placa de agar Mueller-Hinton (MHA) se caliente a temperatura ambiente durante una o dos horas para que cualquier exceso de humedad se absorba dentro del medio.
• Permitir que los discos de antibióticos se equilibren a la temperatura ambiente durante una o dos horas para minimizar la condensación y reducir la posibilidad de que la humedad afecte la concentración de los antibióticos.
• Agite la suspensión bacteriana para asegurarse que esté bien mezclada.
• Sumerja un hisopo de algodón estéril en la suspensión. Antes de retirar el hisopo remueva el exceso de líquido presionándolo contra la pared del tubo.
• Aplique el hisopo contra la superficie de la placa MHA y cubra la superficie de la misma frotando de ida y vuelta de un borde al otro. Rote la placa unos 60º y repita el procedimiento. Rote nuevamente la placa 60º y frote toda la placa por tercera vez para garantizar que el inóculo sea distribuido homogéneamente.
de las placas
• Invierta las placas MHA y colóquelas dentro de la incubadora a 35 ± 2°C dentro de los 15 minutos posteriores a la aplicación de los discos.
Lectura de las placas
• Observar si las bacterias crecen alrededor de los discos impregnados con antibióticos o si existen zonas de no crecimiento denominados “halos de inhibición”.
• Medir los diámetros de los halos de inhibición completa en la base de la placa (incluyendo el diámetro del disco), usando una regla o caliper.
• La lectura obtenida se debe aproximar al valor entero en milímetros más cercano.
• Para la lectura sostener la placa contra un fondo negro e iluminada con luz reflejada. Tener la precaución de observar la placa siguiendo una vertical directa para evitar una lectura errónea de las marcas de la regla por efecto de paralelismo.
La concentración del antibiótico disminuye a medida que se aleja del disco, y en un punto crítico determinado, la concentración de antibiótico es incapaz de inhibir el crecimiento de la bacteria estudiada. Este fenómeno determina la formación de un halo de inhibición.
Aplicación de los discos de antibióticos
• Colocar con una pinza los discos de antibióticos dentro de los 15 minutos siguientes a la inoculación de la placa MHA.
• El diámetro de los discos según las normas de la Organización Mundial de la Salud (OMS) debe ser de 6 mm.
• Distribuir los discos uniformemente, de modo que estén a una distancia mínima de 24 mm de centro a centro.
• Pueden aplicarse hasta 12 discos en una placa de 150 mm de diámetro o hasta 5 discos en una placa de 100 mm, para evitar la superposición de las zonas de inhibición.
• Presionar cada disco aplicado para asegurar el contacto completo de éste con la superficie del agar.
• No reubicar los discos una vez que estos han tocado la superficie del agar.
• La CIM se define como la concentración más débil de un antibiótico capaz de inhibir el crecimiento bacteriano al cabo de 18 – 24 horas de incubación .
- CMB: Es la menor concentración capaz de matar el 99,9% dela población bacteriana.
• La CIM se define como la concentración más débil de un antibiótico capaz de inhibir el crecimiento bacteriano al cabo de 18 – 24 horas de incubación .
CMB: Es la menor concentración capaz de matar el 99,9% dela población bacteriana.
¿Qué es la CMI? La CMI, o concentración mínima inhibitoria, es la concentración más baja (en μg/ml) de un antibiótico que inhibe el crecimiento de una determinada cepa bacteriana.
0.25 UG/ML ANTIBIOGRAMA
Utiliza una tira absorbente con un gradiente conocido de concentración de antibiótico a lo largo de su longitud. Cuando la tira se coloca en la placa de agar inoculada con el organismo de prueba, el antibiótico de prueba se difunde en el medio. La MIC se registra como la concentración más baja del gradiente que inhibe el crecimiento del organismo.
¿Qué es un fenotipo de resistencia?
El conjunto de datos del antibiograma (valores de concentración mínima inhibitoria [CMI] o halos de inhibición) y su interpretación (sensible, intermedio, resistente) se denomina fenotipo de resistencia