2. FISH (Hibridación in situ con fluorescencia)
• Requiere saber lo que se busca
• Tener la sonda adecuada
Otras técnicas:
• Requieren equipos muy sofisticados y apoyo
informático
SKY (Cariotipo espectral multicolor)
CGH (Hibridación Genómica Comparada)
3. Se puede realizar en
núcleos interfásicos o
en división
Se suelen utilizar
simultáneamente
distintas sondas,
marcadas con
flurorocromos de
diferentes colores :
•Rojo: rodamina
•Verde: fluoresceína
•Azul: dapi
4.
5. Tipos de sondas
Especificas de regiones: Sondas teloméricas
Sondas centroméricas
Especificas de cromosomas: Pintados cromosómicos
Especificas de secuencia: Sondas únicas, Sondas génicas
13. Síndrome de Williams
(del 7q11.23)
7q11.23 rojo, centrómero
cromosoma 7 verde
Sondas específicas
de secuencia
Dirigidas a una región
concreta
útiles para detectar
síndromes por
microdelección
14.
15. Cariotipo Espectral Multicolor (SKY)
• Hibridación in situ con sondas específicas de
cada cromosoma (El aparato es capaz de
diferenciar 24 colores).
• Identificación unívoca del material cromosómico
reordenado en translocaciones y marcadores
complejos
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17.
18. Es una técnica cuyo objetivo es
obtener una gran cantidad de copias
de un fragmento de ADN de interés,
partiendo de una pequeña muestra
Con la amplificación resulta mas fácil
identificar virus o bacterias causantes
de enfermedades , identificar
personas ,o hacer investigación
científica sobre el ADN amplificado.
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30.
31. Permite identificar regiones específicas de
ADN que han sido fragmentadas por una
enzima de restricción.
32. 1. Extracción del ADN
2. Digestión del ADN con una endonucleasa de restricción
3. Electroforesis en gel de agarosa
4. Preparación de un ensayo de Southern ("Southern blot")
5. Hibridación con sonda radioactiva
6. Detección de los RFLPs mediante autorradiografía
7. Reensayar el resultado del Southern con sondas adicionales
33. El producto del Southern puede ser
hibridado con una sonda de ADN marcada
radiactivamente específica para el gen o
región del ADN objeto de estudio
34.
35.
36. El procedimiento
general comienza con
la extracción del RNA
total de una muestra de
tejido homogenizado.
Las muestras de ARN
son entonces separadas
por electroforesis en
gel.
Dada la fragilidad de
los geles y la
incapacidad de las
sondas para penetrar
en la matriz, las
muestras de RNA,
separadas por tamaño
tras la electroforesis,
serán transferidas a
una membrana de
Nailon por medio de
capilaridad o un
sistema de
transferencia al vacío.
Los sistemas de
capilaridad iónica se
utilizan para
transferir el ARN
desde un gel de
electroforesis a una
membrana de
Northern blot.
Después del marcaje
de la sonda, ésta se
hibrida con el RNA
en la membrana.
Finalmente, la
membrana debe de
lavarse para
asegurar que la
sonda se ha unido
de forma específica
y para evitar ruido
de fondo en las
señales emitidas por
la misma.
37. El northern Blot permite
observar un patrón particular
de expresión genética entre
tejidos, órganos, estadios del
desarrollo, niveles de estrés
ambiental, infecciones
causadas por patógenos y
durante el curso del
tratamiento de las mismas.
Esta técnica se ha utilizado
para mostrar la sobreexpresión
de oncogenes y la
desregulación de genes
supresores tumorales en
células cancerosas cuando son
comparadas con tejidos
normales.
Los patrones de expresión
obtenidos nos ayudan a conocer
las funciones de los genes. Desde
que el RNA se separó por su
tamaño, las sondas contra el
mismo pueden darnos una idea
de su tamaño, sugerir ayuste
alternativo, o motivos repetidos
en la secuencia.
La variación en el tamaño del
producto de un gen puede
además indicarnos delecciones o
errores en el proceso de
transcripción.
Alterando la sonda podemos
conocer la secuencia e incluso
determinar que región del RNA
ha sido deleccionada.
38.
39. Es una técnica que se utiliza para identificar y
localizar proteínas con base en su capacidad
para unirse a anticuerpos específicos.
41. Proteínas de menor peso
(p17, p24)
Proteínas de mayor peso
Migran mas lejos Se mantienen cerca
al lugar de deposito
42. Después de transferirlo a una tira de
nitrocelulosa y haber pasado por unos
procesos de incubación revelara una banda
coloreada en las zonas correspondientes a los
Ac específicos.
44. Requiere al menos de dos bandas de
envoltura, que se considera la más
específica.
Se obtiene por la ausencia de bandas.
Aparece algunas bandas pero no
para considerarse como positivo.
45. A. Principal desventaja es el elevado precio, que lo
hace inviable como prueba de confirmación en
algunos países.
B. La variabilidad reaccional que existe en las
bandas según el tipo de ensayo, el tipo de las
muestras, las condiciones técnicas y la
subjetividad de la interpretación de la intensidad
de las bandas, que siempre depende del
observador.
46. Detección de mutaciones puntuales: como delecciones,
inversiones cromosómicas, entre otras.
Diagnostico Prenatal: como enfermedades genéticas de
una forma temprana
Diagnostico de infecciones por virus, bacterias y parásitos.
Oncogenes
Notas del editor
Tanto la citogenética convencional como la molecular tienen sus ventajas e inconvenientes. La ventaja de la CC es su bajo coste económico. Su limitación es que su resolución es muy escasa ( podemos ver pérdidas o ganancias de grandes regiones que puede que lleven en su interior muchos genes, recordemos que el tamaño de una banda es de aproximadamente 8 Mb, mientras que un gen tiene un tamaño entre 1,5 Kb y 2 Mb.
El software de SKY ofrece la posibilidad de asignar al espectro de cada pixel un valor matemático y clasificar la imagen según esos valores. El SKy ve mejor que nuestros ojos. Se consiguen 24 colores, uno para cada cromosoma,