1. Biopsias
Cátedra de Anatomía Patológica. Facultad de Medicina. U. N. T.

2. OBJETIVOS
 Definir biopsia
 Señalar los aspectos
generales, características primordiales e
importancia de una biopsia
 Describir las principales característicasde los
diferentes tipos de biopsias
 Manejar el tejido bajo las normas adecuadas
para su fijación, rotulación y envío.
 Interpretar el informe anatomo patológico y
su significado clínico terapéutico.

3. MÉTODOS DE LA
ANATOMÍA PATOLÓGICA
 Patología Postmortem. Autopsias
 Patología Quirúrgica. Biopsias
 Citopatología
 Experimental
 Otros

4. BIOPSIA
“Método de la anatomía
patológica que estudia los
tejidos obtenidos de pacientes
vivos con fines diagnosticos,
pronósticos y de seguimiento”

5. TIPOS DE BIOPSIA
Incisional Dirigidas
Excisional No dirigidas
De órgano
Total
Parcial
Intraoperatoria
Punción Biopsia

6. TIPOS DE BIOPSIA
Dirigida
Endoscopica
Colposcópica
Dermatoscópica
Estereotaxica
No Dirigida
A ciegas

7. BIOPSIA INCISIONAL
Cuando toma parte de la lesión.
Ej: punch de en lesion extensa de piel
biopsia endoscópica en tumor >2cm

8. BIOPSIA ESCISIONAL
Cuando en la muestra se extrae la lesión en
su totalidad.
Ej: losange de piel
polipectomía

9. BIOPSIA ESCISIONAL

10. BIOPSIA DE ÓRGANO
Consiste en el estudio de materiales obtenidos
durante un acto quirúrgico, generalmente el
material está representado por todo o parte
de un órgano. El procesamiento se realiza en
base a un protocolo pre establecido que indica
pautas que van desde la apertura de la pieza
hasta obtención de muestras representativas.

11. ÓRGANO TOTAL

12. ÓRGANO TOTAL

13. ÓRGANO PARCIAL

14. BIOPSIAS DIRIGIDAS
Biopsias endoscópicas: es un tipo de
biopsia dirigida que permite la obtención del
material de órganos huecos ( tubo digestivo,
árbol respiratorio, vias urinarias) o cavidades
(pleural, pericardica, abdominal)

15. BIOPSIAS DIRIGIDAS
Biopsias colposcopicas : se utilizan en
lesiones precursoras de cuello uterino.

16. BIOPSIAS DIRIGIDAS
Biopsias estereotáxicas: con la ayuda
de métodos imagenológicos se localiza
tridimensionalmente la lesión y se obtiene
tejido. Ej mama y SNC

17. BIOPSIA DIRIGIDA ENDOSCÓPICA

18. BIOPSIA INTRAOPERATORIA
Es el estudio del material obtenido
durante el acto operatorio para
determinar la naturaleza de la lesión y
emitir un diagnóstico que permita al
cirujano adoptar una conducta quirúrgica
adecuada.

19. BIOPSIA INTRAOPERATORIA
Requiere de instrumental (criostato) y
ambiente adecuados.
Se utiliza el tejido en fresco.
Fijador es el frío.

20. BIOPSIA INTRAOPERATORIA

21. BIOPSIA INTRAOPERATORIA

22. BIOPSIA INTRAOPERATORIA

23. BIOPSIA INTRAOPERATORIA:
CONTROL DE MÁRGENES

24. BIOPSIA DIFERIDA
CONTROL DE MÁRGENES

25. BIOPSIA POR PUNCIÓN
 Consiste en la obtención de un cilindro de
tejido del órgano afectado, utilizando
agujas especiales de grueso calibre 0.2cm
de diametro.
 Se aplica para el diagnóstico de patologías
que afectan a órganos parenquimatosos
en forma difusa (cirrosis hepatica,
glomerulopatias) o localizada solida
(tumor)
 El material obtenido se incluye totalmente
y se procesa en forma seriada.

26. BIOPSIA POR PUNCIÓN
Puede realizarse :
 A ciegas: sobre el sitio donde se
sospecha que se encuentra la lesión.
 Dirigida: mediante aparatos que
permiten visualizar el sitio de punción
(ecografía, TAC) Ej: punción biopsia de
mama con mammotome.

27. BIOPSIA POR PUNCIÓN

28. BIOPSIA POR PUNCIÓN DIRIGIDA

29. BIOPSIA POR PUNCIÓN

30. BIOPSIA POR PUNCIÓN

31. PASOS A SEGUIR
 Recepción del material: todo el material
ingresado deberá ir acompañado de los datos
personales del paciente, breve resumen de la
Historia clínica, tipo y características, motivo del
estudio solicitado y diagnóstico presuntivo.
 Fijación: permite preservar la estructura y
funcion de los tejidos e impedir la autolisis.
Consiste en sumergir el material en una solución
de formol al 10 % en recipiente de boca ancha.

32. PASOS A SEGUIR
 Macroscopía: consiste en la inspección del
material y su descripción, lo más semejante a la
realidad, indicando los siguientes aspectos:
ÓRGANOS PARENQUIMATOSOS
 Tamaño, color, forma, superficie externa
 Peso
 Consistencia
 Hallazgos
 Superficie de corte

33. PASOS A SEGUIR
ÓRGANOS HUECOS
 Tamaño, forma, serosa
 Peso
 Pared (espesor, consistencia, hallazgos)
 Mucosa (color, pliegues, aspecto, hallazgos)
 Luz

34. PASOS A SEGUIR
 Existen protocolos de descripción
macroscópica tipo.
 Se complementa con la selección de
muestras representativas, lo cual también
está pre-establecido en los protocolos

35. PASOS A SEGUIR
 Procesamiento histológico: Los pasos a
seguir son:
– Deshidratación: pases sucesivos en alcohol
96º, acetato (2) y Xilol (2). Permite extraer el
agua de los tejidos.
– Baño e inclusión en parafina
– Corte
– Coloración

36. PASOS A SEGUIR
 Diagnóstico: en algunos casos se utilizan
protocolos microscópicos o breves descripciones
microscópicas seguidas por uno o más diagnósticos
que incluirán datos de valor pronóstico y de
orientación terapéutica.

37. INFORME ANATOMOPATOLÓGICO
Debe reunir las siguientes condiciones:
 Datos del paciente
 Descripción macro y microscópica detallada pero
concreta
 Protocolo
 Diagnóstico jerarquizado
 Debe concretarse a los aspectos relacionados con el
pronóstico y la terapéutica.

38. BIBLIOGRAFÍA
 Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El
Ateneo. Bs As .1992
 Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía
Patológica. Ed. Doyma.1989.
 Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S..
Patología estructural y funcional. 4º Ed.
1990
 “Guía de Métodos”. Sánchez Segura, M.;
Nieman Y.;Cátedra de Anatomía
Patológica, Facultad de
Medicina, Universidad Nacional de
Tucumán, 2001.

39. Fin de la presentación

40. BIOPSIA
ESTUDIOS COMPLEMENTARIOS
Cátedra de Anatomía Patológica
Facultad de Medicina
U.N.T.

41. INFORME ANATOMOPATOLÓGICO
Debe reunir las siguientes condiciones:
 Datos del paciente
 Descripción macro y microscópica detallada pero
concreta
 Protocolo
 Diagnóstico jerarquizado
 Debe concretarse a los aspectos relacionados con el
pronóstico y la terapéutica.

42. BIOPSIA
 Técnica de rutina:
Hematoxilina- eosina
 Coloraciones especiales:
Giemsa (Helicobacter Pylori)
Azul Alcian (Esófago de Barret)
Ziehl Nielsen (BAAR)
Rojo Congo (Amiloide)
PAS (Hongos)

43. OTROS MÉTODOS
 Microscopía electronica
 Inmunofluoresencia
 Polarización
 Inmunomarcación
 Patología Molecular:
 Captura híbrida
 PCR

44. MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA
-Alcanza una magnificación de 500.000
aumentos.
-Utiliza un haz de electrones.
-Se enfoca por campos magnéticos sobre
pantalla fluorescente o placas fotográficas.
-Se usa por ej. en patología glomerular
para detectar cambios mínimos en
podocitos,membranas
basales,mesangio, etc.

45. INMUNOFLUORESCENCIA
 En tejidos sin fijación.
 Usa coloración fluorescente que debe
registrarse microfotograficamente por que
se degrada.
 Forma un trípode diagnóstico para las
enfermedades glomerulares con la ME y los
cortes de rutina con H-E, PAS y Tricrómico

46. Depósitos lineales de IgG en Riñón.
Sindrome de Goodpasture. X 100

47. POLARIZACIÓN
 Identifica el carácter birrefringente de
ciertos tipos de depósito fibrilar
colágeno.
 Por ejemplo: amiloide

48. INMUNOMARCACIÓN
Consiste en la detección de antígenos
existentes en células o tejidos
Utiliza anticuerpos monoclonales o policlonales
copulados con una enzima (peroxidasa) que
se unen con dicho antígeno.
Se visualiza con microscopía óptica mediante
coloración marrón del núcleo o citoplasma.

49. INMUNOMARCACIÓN
Epiteliales: citoqueratina 7 y 20.
Mesenquimáticos: vimentina,
desmina.
Linfoides: antígeno común leucocitario-
SNC: S100, PGFA-
HMB 45: melanoma

50. CANCER DE MAMA
Inmunomarcación
Estrogénicos Progesterónicos
Catepsina D C-erb B-2 (HER2-neu)

51. PATOLOGÍA MOLECULAR
 Permite conocer el mecanismo por el
cual se origina una neoplasia.
 Aporta información de valor
pronóstico.
 Predice en algunos casos la respuesta
a la terapia.

52. VALOR PRONÓSTICO
 Cambio cromosómico primario: asociado a los
mecanismos moleculares responsables de la
neoplasia.
 Cambio cromosómico secundario: la
enfermedad sigue un curso más agresivo,
haciéndose más resistente a la terapia y difícil de
obtener una remisión completa.
 Presencia o ausencia de células normales: La
ausencia indica peor pronóstico.
 Presencia de dobles diminutos: confiere mayor
resistencia a la terapia.

53. TÉCNICA DE HIBRIDIZACIÓN IN SITU
(HIS)
 Permite detectar y localizar secuencias específicas
de ADN o ARN.
 Requiere de una desnaturalización (rotura de los
enlaces) de ADN de la muestra y de la sonda
utilizada.
 Hibridación de los ADN de la muestra y la sonda
por complementariedad de bases.
 Interpretación microscópica de acuerdo a la sonda
utilizada.

54. TIPOS DE SONDA
 Centroméricas: marcan la región centromérica.
Puede valorar la presencia o ausencia de
alteraciones numéricas.
 De pintado cromosómico: abarcan todo el
cromosoma. Para alteraciones numéricas y
estructurales en metafase y translocaciones
complejas.
 De secuencia única: marcan regiones
cromosómicas muy concretas. Para alteraciones
numéricas y estructurales en metafase e interfase.

55. NUEVAS TÉCNICAS DE
HIS
 Multicolor FISH: 24 sondas de marcado
cromosómico marcados con fluorescencia sobre
metafase.
 Mulibanding FISH: alteración estructural dentro
de un mismo cromosoma, utiliza células en división.
 Hibridación Genómica comparada (HGC):
detecta cambios numéricos de secuencias de ADN
en tumores de índice proliferativo bajo.

59. MICROARRAYS
 Son soportes sólidos en los que moléculas de ADN de cadena simple
se fijan y permiten identificar por hibridación la expresión de una
multitud de genes de una muestra biológica.
 Aislamiento de ARN de tejido normal y de una muestra de referencia.
 Síntesis de ADN y marcaje con dos colorantes fluorescentes (Cy3 y
Cy5).
 Hibridación sobre el array.
 La diferencia de expresión del ARN entre ambos tejidos se puede
evaluar a partir de la relación Cy3/Cy5 para cada gen.
 El análisis nos permite definir el patrón de expresión génica para cada
muestra concreta.

60. MICROARRAYS
Principales aplicaciones:
 Clasificación de neoplasias morfológicamente
similares pero con comportamiento biológico
heterogéneo.
 Evaluación del pronóstico.
 Respuesta al tratamiento.

61. PCR
 Preparación y dosaje de ácidos
nucleicos (ADN-ARN) por reacción en
cadena de polimerasa (PCR), técnica
de amplificación in vitro de secuencias
conocidas del genoma, que permite la
detección de deleciones, mutaciones o
rearreglos cromosómicos

62. PCR

63. NO OLVIDAR
 Conocer datos clínicos y exámenes complementarios del
paciente.
 Seleccionar el tipo de biopsia a realizar según la patología y
órgano afectado.
 Envío del material en óptimas condiciones y con los datos
pertinentes.
 Fijación y procesamiento adecuados.
 Descripción macroscópica.
 Diagnósticos microscópicos.
 Aspectos relacionados con el pronóstico y terapéutica.

64. BIBLIOGRAFÍA
 Besuschio, S.C.. Patología general. Ed. El Ateneo.
Bs As .1992
 Cooke, R. A. Stewart, B. Atlas de Anatomía
Patológica. Ed. Doyma.1989.
 Cotran R.S.; Kumar, V.y Robbins, S.. Patología
estructural y funcional. 4º Ed. 1990
 XXII Congreso de la SEAP. Curso largo de Patología
Molecular. 2005
 XXII Congreso de la SEAP. Aplicaciones
diagnósticas del FISH en Patología. 2005
 XXII Congreso de la SEAP. Seminario del club de
Inmunohistoquímica y Patología Molecular. 2005

65. Fin de la presentación