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Clase I Histologia
1. Universidad de Carabobo Facultad de Ciencias de la Salud Escuela de Ciencias Biomédicas y Tecnológicas Departamento de Ciencias Morfológicas y Forenses Asignatura: Morfología Microscópica Prof. Mayra Jiménez BIENVENIDOS
2. Unidad I. Introducción al estudio de la Histología y Morfología Celular Objetivo General : Especificar las herramientas que utiliza la histología para el estudio ultraestructural de tejidos y de la célula como unidad morfológica y funcional del organismo Contenido: • Histología. Concepto y aplicaciones Científicas y clínicas. • Tecnica Histológica. Etapas en la preparación de tejidos para su estudio al microscopio óptico y electrónico. • Histoquímica y Citoquímica • Microscopía. Tipos de Microscopios y aplicación. Microscopio óptico: partes y funcionamiento. Microscopio electrónico: de transmisión y de barrido.
3. ¿Qué es la Histología? Etimológicamente: histo= tejido logos: estudio ⌂ Es la rama de la biología encargada del análisis microscópico de la anatomía celular y tisular de los tejidos biológicos. ⌂ Marcello Malpighi es reconocido como el fundador de la Histología ⌂ Las primeras investigaciones histológicas se hicieron en el siglo XVII gracias a la invención del microscopio óptico por Antonio Van Leeuwenhoek
4. ¿Qué es la Anatomía? ⌂ Es el estudio de la forma y la estructura de los organismos vivos organizados ⌂ Anatomía Macroscópica: estudio de las estructuras observables a simple vista ⌂ Anatomía Microscópica: es aquella que requiere de auxiliares ópticos ¿Qué es la Citología? o biología celular es una disciplina académica que se encarga del estudio de las células en cuanto a lo que respecta a las propiedades, estructura, funciones, organelos que contienen, su interacción con el ambiente y su ciclo vital.
5. Célula: Unidad morfológica y funcional de todo ser vivo. Es el elemento de menor tamaño que puede considerarse vivo. Ejm: Tejido: agrupación de células con la misma función Órgano: unidad funcional mayor compuesto por distintos tipos de tejido Sistema de Órganos: conjunto de órganos con funciones relacionadas La Histología re presenta un nexo de unión entre la bioquímica, la fisiología, la anatomía, la genética, la clínica y la patología.
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7. Biopsias : son trozos de tejido que se obtienen de un sujeto con vida con el objeto de estudiarlos al microscopio y efectuar un diagnóstico histopatológico. Piezas operadas : los tejidos que han sido extraídos de las intervenciones quirúrgicas, generalmente tumores u órganos inflamados, también pueden darnos material de investigación.
8. Fundamentos Generales de la Preparación Histológica de los tejidos 1.- Obtención de la muestra : mediante extirpación de pequeños fragmentos de tejido (humano o animal) 2.- Fijación: Su propósito es mantener la morfología del tejido lo más parecida posible a lo que ésta tenía antes de hacer la extracción. (formaldehído al 37%) Métodos: Químico -> inmersión Físico: congelación La formalina no preserva todos los componentes de la célula y los tejidos
9. Fundamentos Generales de la Preparación Histológica de los tejidos 3.- Deshidratación: proceso por el cual se elimina completamente el agua de la muestra para que se pueda embeber adecuadamente el tejido en aquellos medios de inclusión que no sean hidrosolubles. (Alcohol etilíco en concentraciones crecientes) 4.- Aclaramiento: proceso por el cual se consigue la sustitución del agente deshidratante por una sustancia miscible con el medio de inclusión. (Xilol) 5.- Infiltración (Impregnación) Proceso que tiene por objeto “rellenar o infiltrar” completamente la muestra histológica con el medio que se va a usar para la imbibición del tejido. (Baños sucesivos de parafina fundida)
10. Fundamentos Generales de la Preparación Histológica de los tejidos 6.- Encastramiento del tejido y confección de los bloques: consiste en la obtención de un bloque sólido de tejido más medio de inclusión, mediante el enfriamiento lento a 10-15ºC: El bloque sólido se llama TACO 7.- Orientación de la pieza: para realizar el corte del tejido se monta el taco en el microtomo (aparato equipado con una hoja de acero) y se obtienen cortes sumamente delgados cuyo grosor para microscopía óptica varía entre 5 – 10 micrómetros 1milímetro = 1000 micrómetros
11. Fundamentos Generales de la Preparación Histológica de los tejidos 8.- Montaje: los cortes se colocan sobre láminas portaobjetos cubiertos previamente con capa de albúmina o gelatina 9.- Aclaramiento: Extracción de la parafina con xilol 10.- Rehidratación: desplazar el xilol por agua. Alcohol con agua en concentraciones decrecientes 11.- Tinción o Coloración: con colorantes histológicos en su mayoría en solución acuosa
12. Reducción de la pieza Fijación de la muestra Introducción en cassette de deshidratación Deshidratación en alcoholes sucesivos Penetración de la parafina 56-58ºC Barras de Leuckart Fundamentos Generales de la Preparación Histológica de los tejidos
13. Fractura del taco para cortar Corte en microtomo Bateria de coloración H&E Fundamentos Generales de la Preparación Histológica de los tejidos
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15. Correlación Clínica: Biopsias por congelación • Evaluar de inmediato el tejido obtenido durante el acto quirúrgico y el diagnóstico instantáneo determina el paso siguiente en la cirugía • Para identificar hallazgos intraoperatorios inesperados • Para saber si se ha extirpado toda la masa patológica y si el borde de la resección quirúrgica está libre de tejido enfermo • Se congelan fragmentos de tejido usando anhídrido carbónico comprimido o un líquido frío (isopentano) a una temp de -50ºC • Corte del tejido congelado en un criostato (cámara refrigerada que contiene un microtomo) • Montaje del corte en un portaobjetos • Tinción del corte: HE, azul de metileno y PAS • El proceso puede tardar 10 minutos y el resultado se comunica al cirujano inmediatamente
16. Histoquímica y Citoquímica Se ocupan de investigar la actividad química que tiene lugar en las células y los tejidos. Se fundamentan en: • La unión específica de un colorante • El uso de anticuerpos marcados con un colorante fluorescente • La actividad enzimática inherente de un elemento constitutivo de las células Composición química de las muestras histológicas • La composición química de un tejido listo para una coloración de rutina es difrente de la del tejido vivo • Los componentes que perduran son moléculas grandes que no se disuelven con facilidad con el fijador. Entre ellas: nucleoproteínas, proteínas intracelulares del citoesqueleto, proteínas extracelulares, complejos de fosfolípidos y proteínas (o carbohidratos) en las membranas.
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18. Coloraciones Utilizadas en Microscopía Óptica Fundamento: Radica en la propiedad que tienen todos los tejidos para incorporar y fijar de modo variable diversas sustancias Coloreadas. Según su afinidad tisular: • Colorantes Básicos: poseen una carga global positiva (catiónicos), reaccionan con los componentes aniónicos de las células. Ej. Hematoxilina • Colorantes Ácidos: poseen una carga global negativa (aniónicos), reaccionan con los componentes catiónicos de las células. Ej. Eosina • Colorantes neutros: su carga global es neutra. Propiedad de colorear junta o separadamente diversas estructuras. Ej. Giemsa • Colorantes metacromáticos: colorantes básicos. Producen tonos de color totalmente distintos al que se espera por el colorante empleado • Colorantes Indiferentes: no poseen carácter ácido, básico o salino definido. Colorean mediante impregnación.
19. Coloraciones Utilizadas en Microscopía Óptica Hematoxilina-Eosina (HE): utiliza dos tipos de colorantes. La hematoxilina que es un colorante básico, colorea los componentes ácidos de la célula (núcleo) de color morado; y la eosina que es un colorante ácido se une a estructuras básicas de la célula (citoplasma) otorgándole una tonalidad rosada Tinción de Giemsa Colorante neutro Tinción Azul de Toluidina Colorante metacromático Impregnación con sales de plata Coloración indiferente
20. Coloraciones Utilizadas en Microscopía Óptica • Coloración con PAS (ácido periódico-Shiff): se usa para determinar la presencia de macromoléculas ricas en glúcidos como glucógeno, glucoproteínas y glucosaminoglucanos. Se observa color fucsia al microscopio óptico. • Coloración con Azán: (tricrómica): se obtiene tres colores diferentes: Azul oscuro en los núcleos de la célula; rojo en el músculo, queratina y citoplasma celular, y azul claro en el mucinógeno y colágeno, o sea en el tejido conjuntivo • Coloración con metales: actúan impregnando a ciertos componentes celulares. Se usan para demostrar aparato de golgi, y las neurofibrillas.
21. Coloraciones Utilizadas en Microscopía Óptica • Coloración con hematoxilina férrica: útil para estudiar detalles celulares finos. Ej. Las fibras elásticas y las mitocondrias presentes en el citoplasma de ciertas células • Tricrómico de Cajal y Gallego: implica el uso de tres colorantes. Para demostración diferencial y selectiva de las fibras colágenas y del músculo. • La orceína y la fucsina resorcina: son colorantes para fibras elásticas. Se observan entre bordeau y castaño oscuro. • Carmín de Best : para tinción nuclear y detección de glucógeno
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25. La Luz como onda En una onda electromagnética, por ejemplo, el campo eléctrico cambia en intensidad de manera cíclica así: • Cada ciclo de la onda se repite en intervalos separados por una longitud de onda • La frecuencia mide el número de estos ciclos que ocurren cada segundo.
26. • En la luz, la longitud de onda determina el color de la luz (por ejemplo la longitud de onda correspondiente al color verde es de 550 nanómetros) EL ESPECTRO ÓPTICO La luz blanca está compuesta de ondas de diversas frecuencias. Cuando un rayo de luz blanca pasa por un prisma se separa en sus componentes de acuerdo a la longitud de onda así:
32. OTROS SISTEMAS ÓPTICOS • Microscopio de Contraste de Fase: Aprovecha las pequeñas diferencias en el índice de refracción que hay en diferentes partes de una muestra de células o tejidos. - Las partes oscuras corresponden a las regiones densas y las partes claras corresponde a las regiones menos densas Utilidad: permite observar las células en acción y estudiar los movimientos implicados en procesos como la mitosis o la migración celular. Estudiar cortes semifinos no teñidos
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38. Microscopio electrónico de barrido - El haz de electrones no atraviesa la muestra sino que explora (barre) su superficie. - Forma una imagen de tipo tridimensional en un tubo de rayos catódicos de alta resolución.