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Universidad de los Andes
Enfermería del Adulto




                   Abril Santander V.
                   Profesora:
                   Mariela Anastasiadis
Definición

   Extracción de sangre con técnica
    aséptica para determinar la
    presencia de algún agente en la
    sangre a través de un cultivo de esta
Objetivo Hemocultivo
   Determinar la presencia de
    microorganismos en sangre a través de una
    muestra obtenida por una punción diferente
    y de manera aséptica

   El hemocultivo o cultivo microbiológico de la
    sangre constituye en los casos de
    septicemia, el único examen que permite su
    confirmación.

   En caso de bacteremia permite aislar el
    agente causal.
Indicaciones
   Sospecha de bacteremia en pacientes con o sin
    foco de infección, de origen desconocido

   Para la identificación del agente causal de alguna
    patología:
    -   Septicemia severa     -   Neumonía
    -   Meningitis            -   Endocarditis infecciosa
    -   Osteomielitis         -   Episodios febriles
    -   Artritis              -   Otros
Materiales
   Frascos de hemocultivo
   Jeringas de 10 cc (variable, dependiendo de
    cantidad de hemocultivos)
   Guantes estériles y de procedimiento
   Agua, jabón y papel desechable para lavar la
    zona de punción
   Tórulas grandes estériles
   Bolsa de desecho
   Riñón estéril
   Corto punzante
   Clorhexidina 2-4%
   Mascarilla (dependiendo de las normas del
    hospital)
   Liga
Procedimiento
1.   Revisión orden médica e identificar
     paciente correcto (brazalete)
2.   Lavado de manos
3.   Reunir material y llevarlo a la unidad del
     paciente
4.   Solicitar un ayudante
5.   Control de la temperatura del paciente
6.   Valoración de vena a puncionar
     (periférica)
7.   Lavado con agua y jabón de la zona a
     puncionar, secar con toalla desechable
8.   Colocarse mascarilla (según norma)
9.   Lavado de manos
Procedimiento…
10.   Colocarse guantes estériles
11.   Ayudante presenta material estéril
12.   Operador arma jeringas y dejar en
      riñón estéril
13.   Ayudante vierte clorhexidina 2-4%
      (Esperar a que el antiséptico se seque
      para que ejerza su acción residual)
14.   Operador pincela la zona de punción
      con el antiséptico
15.   Ayudante liga al paciente 10 cm sobre
      sitio de punción cuidando de no
      contaminar
Procedimiento…
16. Realiza punción venosa extrayendo la
    cantidad de sangre requerida
17. Ayudante suelta ligadura
18. Operador retira jeringa e inocula la
    sangre en el frasco de hemocultivo
    previamente aseptizado
19. Botar aguja en corto punzante
     y ordenar el resto del material
Procedimiento…
20.   Ayudante controla sitio de punción y
      coloca tela si es necesario
21.   Rotular frasco de hemocultivo (nombre
      del paciente, servicio y pieza del
      paciente completo , hora, T°, iniciales
      del operador)
22.   Lavado de manos
23.   Mantener botellas a T° amb y
      enviar rápidamente a
      laboratorio, nunca refrigerar)
21.   Registro
Recomendaciones
   Preparación de la piel es esencial para evitar
    contaminación de la muestra

   Vaciar la muestra suavemente, evita la hemodiálisis, ya
    que podría interpretarse como hemocultivo +

   Si requieren varios hemocultivos seriados, se deben
    tomar muestras de diferente punción

   Si tiene que tomar varios exámenes, el hemocultivo
    debe ser la primera muestra.

   Si no se logra obtener sangre en la 1era punción, debe
    cambiar la aguja

   Volumen de muestra: 10 ml en adultos y variable en
    niños : Recién nacidos 1-2ml, 1mes a dos años 2-3ml,
    mayores de 2 años3-5ml, adolescentes 10ml
Recomendaciones…
   Se ha comprobado que el mejor momento para obtener
    la muestra es 2-3 horas antes del peak febril, lo que es
    muy difícil de predecir. Para esto se recomienda obtener
    3-4 muestras tomadas con un lapso de 30 minutos, en
    diferentes sitios de punción.

   Las muestras deben obtenerse antes de la
    administración de ATB. Cuando el paciente ya esta
    recibiendo Antimicrobianos la probabilidad de aislar el
    agente disminuye

   Sí el paciente está con antibioterapia, el hemocultivo
    debe tomarse antes de corresponder la siguiente dosis y
    consignarlo en la orden, medicamento, dosis, hora de
    administración de la última dosis.
Bibliografía
   Hemocultivos. Boletín de Escuela de medicina
    , Universidad Católica,
    http://escuela.med.puc.cl/paginas/publicacion
    es/boletin/html/laboratorio/laboratorio04.html
   Tecnica de hemocultivos,
    http://www.ispch.cl/lab_sal/doc/proc_emo.pdf
   Procedimiento de toma de muestra para
    hemocultivo. Escuela de enfermería,
    Universidad de Valparaíso
    http://prontus.uv.cl/pubacademica/pubprofesor
    es/l/publandmancecilia/site/artic/20070119/as
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Hemocultivo

  • 1. Universidad de los Andes Enfermería del Adulto Abril Santander V. Profesora: Mariela Anastasiadis
  • 2. Definición  Extracción de sangre con técnica aséptica para determinar la presencia de algún agente en la sangre a través de un cultivo de esta
  • 3. Objetivo Hemocultivo  Determinar la presencia de microorganismos en sangre a través de una muestra obtenida por una punción diferente y de manera aséptica  El hemocultivo o cultivo microbiológico de la sangre constituye en los casos de septicemia, el único examen que permite su confirmación.  En caso de bacteremia permite aislar el agente causal.
  • 4. Indicaciones  Sospecha de bacteremia en pacientes con o sin foco de infección, de origen desconocido  Para la identificación del agente causal de alguna patología: - Septicemia severa - Neumonía - Meningitis - Endocarditis infecciosa - Osteomielitis - Episodios febriles - Artritis - Otros
  • 5. Materiales  Frascos de hemocultivo  Jeringas de 10 cc (variable, dependiendo de cantidad de hemocultivos)  Guantes estériles y de procedimiento  Agua, jabón y papel desechable para lavar la zona de punción  Tórulas grandes estériles  Bolsa de desecho  Riñón estéril  Corto punzante  Clorhexidina 2-4%  Mascarilla (dependiendo de las normas del hospital)  Liga
  • 6. Procedimiento 1. Revisión orden médica e identificar paciente correcto (brazalete) 2. Lavado de manos 3. Reunir material y llevarlo a la unidad del paciente 4. Solicitar un ayudante 5. Control de la temperatura del paciente 6. Valoración de vena a puncionar (periférica) 7. Lavado con agua y jabón de la zona a puncionar, secar con toalla desechable 8. Colocarse mascarilla (según norma) 9. Lavado de manos
  • 7. Procedimiento… 10. Colocarse guantes estériles 11. Ayudante presenta material estéril 12. Operador arma jeringas y dejar en riñón estéril 13. Ayudante vierte clorhexidina 2-4% (Esperar a que el antiséptico se seque para que ejerza su acción residual) 14. Operador pincela la zona de punción con el antiséptico 15. Ayudante liga al paciente 10 cm sobre sitio de punción cuidando de no contaminar
  • 8. Procedimiento… 16. Realiza punción venosa extrayendo la cantidad de sangre requerida 17. Ayudante suelta ligadura 18. Operador retira jeringa e inocula la sangre en el frasco de hemocultivo previamente aseptizado 19. Botar aguja en corto punzante y ordenar el resto del material
  • 9. Procedimiento… 20. Ayudante controla sitio de punción y coloca tela si es necesario 21. Rotular frasco de hemocultivo (nombre del paciente, servicio y pieza del paciente completo , hora, T°, iniciales del operador) 22. Lavado de manos 23. Mantener botellas a T° amb y enviar rápidamente a laboratorio, nunca refrigerar) 21. Registro
  • 10. Recomendaciones  Preparación de la piel es esencial para evitar contaminación de la muestra  Vaciar la muestra suavemente, evita la hemodiálisis, ya que podría interpretarse como hemocultivo +  Si requieren varios hemocultivos seriados, se deben tomar muestras de diferente punción  Si tiene que tomar varios exámenes, el hemocultivo debe ser la primera muestra.  Si no se logra obtener sangre en la 1era punción, debe cambiar la aguja  Volumen de muestra: 10 ml en adultos y variable en niños : Recién nacidos 1-2ml, 1mes a dos años 2-3ml, mayores de 2 años3-5ml, adolescentes 10ml
  • 11. Recomendaciones…  Se ha comprobado que el mejor momento para obtener la muestra es 2-3 horas antes del peak febril, lo que es muy difícil de predecir. Para esto se recomienda obtener 3-4 muestras tomadas con un lapso de 30 minutos, en diferentes sitios de punción.  Las muestras deben obtenerse antes de la administración de ATB. Cuando el paciente ya esta recibiendo Antimicrobianos la probabilidad de aislar el agente disminuye  Sí el paciente está con antibioterapia, el hemocultivo debe tomarse antes de corresponder la siguiente dosis y consignarlo en la orden, medicamento, dosis, hora de administración de la última dosis.
  • 12. Bibliografía  Hemocultivos. Boletín de Escuela de medicina , Universidad Católica, http://escuela.med.puc.cl/paginas/publicacion es/boletin/html/laboratorio/laboratorio04.html  Tecnica de hemocultivos, http://www.ispch.cl/lab_sal/doc/proc_emo.pdf  Procedimiento de toma de muestra para hemocultivo. Escuela de enfermería, Universidad de Valparaíso http://prontus.uv.cl/pubacademica/pubprofesor es/l/publandmancecilia/site/artic/20070119/as ocfile/manual_exs.pdf